Leggyakrabban a genitális traktus nyálkahártyájának kaparásait küldik PCR -re, és ez az elemzés a legpontosabb a ma rendelkezésre álló STD diagnosztikai eszközök közül. Ritkán vér, vizelet, nyál és más biológiai folyadékok PCR -vizsgálatára van szükség.

Elemzési technika

Bizonyos reagensek hatására az elemzésre küldött anyagban lévő baktériumok DNS -e sokszorosára nő, és megkülönböztethetővé és azonosíthatóvá válik az eszközök számára.

Az elemzési eredmények jelentősége

A PCR mindig minőségi elemzés, vagyis a válasz csak „észlelhető” vagy „nem észlelhető”. Fejtsük meg, mi rejtőzik ezen értékek mögött. „Talált”, vagy „pozitív”, vagy egyszerűen „+” - a megfelelő baktérium DNS -ét izolálták a vizsgálati anyagból, és 97% -os valószínűséggel azt mondhatjuk, hogy egy személy fertőzött ezzel a fertőzéssel. „Nem észlelt”, „negatív”, „ -” - a megfelelő baktérium DNS -ét nem izolálták a vizsgálati anyagból, 97% -os valószínűséggel vitatható, hogy ezek a baktériumok nincsenek nagy mennyiségben a beteg szervezetében , 60% valószínűséggel, hogy a beteg nem fertőzött ezzel a fertőzéssel ...

Ahhoz, hogy a baktérium az elemzésre elküldött anyaggal bejusson a kémcsőbe, szükséges, hogy azt bizonyos mennyiségben az emberi szervezet tartalmazza. Ha az emberi szervezetben a baktériumok száma minimális, akkor szinte biztosan nem kerülnek a kémcsőbe, és a teszt eredménye negatív lesz. A személy azonban még mindig fertőzött és beteg. Ezért az eredmény pontosságának maximalizálása érdekében speciális előkészítésre van szükség a PCR diagnosztika elvégzése előtt.

Magas érzékenység és különlegesség

A PCR egy molekuláris diagnosztikai módszer, amely számos fertőzés „aranystandardjává” vált, idővel tesztelt és klinikailag alaposan tesztelt.

A módszer rendkívüli érzékenysége lehetővé teszi szakembereink számára, hogy genetikai információik alapján megbízhatóan észleljék az egyes kórokozókat a biológiai anyagban. Az AmpliSens PCR vizsgálati rendszerek analitikai érzékenysége a legtöbb vírus és baktérium számára - 100 mikroorganizmus reprodukálható kimutatása a biológiai mintában (1000 MIKROORGANIZMUS 1 ML -BEN)

A PCR sajátossága az AmpliSens technológia használatakor, még az összes vírusos, chlamydialis, mycoplasma, ureaplasma és a legtöbb bakteriális fertőzések eléri a 100%-ot.

Biológiai anyagok gyűjtése laboratóriumi kutatásokhoz PCR segítségével

A vérvételt üres gyomorban, a cubitalis vénából végezzük eldobható tűvel (0,8-1,1 mm átmérőjű), 5 ml-es eldobható fecskendőbe vagy speciális „Venoject” vákuumrendszerbe (EDTA-val). Amikor fecskendőbe húzzák, a belőle származó vért óvatosan (habképződés nélkül) antikoagulánssal (6% EDTA -oldat 1:19 arányban vagy 3,8% Na -citrát -oldat 1: 9. A heparin nem használható véralvadásgátlóként), a csövet dugóval lezárjuk, és többször megfordítjuk (az antikoagulánssal való keveréshez). A vérrel ellátott kémcsövet hűtőszekrényben tároljuk + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten a vizsgálatig.

Maximális tárolási idő:

Vírusos hepatitis vizsgálatára - 2 nap

Más fertőzések kutatása során - 5 óra

Az elemzéshez a reggeli vizelet első részét 10 ml mennyiségben kell bevinni egy speciális palackba vagy kémcsőbe tartósítószer nélkül.

A kiválasztott anyag maximális eltarthatósága 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C hőmérsékleten.

A nyál összegyűjtése előtt öblítse ki háromszor a száját sóoldattal. A nyálat 3-5 ml-es egyszer használatos csövekben gyűjtik össze.

Az anyagot közvetlenül a vizsgálat előtt össze kell gyűjteni, vagy azonnal el kell juttatni a laboratóriumba. Ha a gyors szállítás lehetetlen, az anyagot –20 ° C -on fagyasztják. A későbbi szállítás fagyasztott állapotban (jéggel ellátott termoszban) történik.

Orr -garat tampon

Az anyagot egy steril eldobható applikátor munka része veszi fel a garat hátsó részéből és a mandulák kriptáiból. Az anyag összegyűjtése után az applikátort steril eldobható csőbe helyezzük.

Köpet és mellhártya -folyadék

Az anyagot 5-10 ml-es speciális injekciós üvegekbe veszik.

Az anyag maximális eltarthatósága 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten.

Biopsziás anyag

A biopsziás anyagot száraz, eldobható Eppendorf csőbe helyezzük.

Az anyag maximális eltarthatósága 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten.

Szinoviális folyadék

Az anyagot 1 ml -es eldobható fecskendővel veszik be. Az összegyűjtött anyagot száraz, eldobható Eppendorf csőbe helyezzük.

Az anyag maximális eltarthatósága 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten.

Anyaggyűjtés az urogenitális fertőzések elemzésére

Mintavétel nőkből származó anyagokból:

A kaparás három különböző pontból történik:

nyaki csatorna

hátsó hüvelyi fornix

Ha szükséges, a kutatáshoz szükséges anyagot genitális fekélyekből veszik fel (HSV-II, Haemophilus ducrei kutatása).

A kerítés univerzális szondával vagy Volkmann kanállal készül. Ha a kaparást univerzális szondával veszik, akkor a szonda vizsgálati anyagot tartalmazó munkadarabját levágják vagy letörik, és tartósító oldattal ellátott eldobható Eppendorf -csőbe helyezik. Ha a mintát Volkmann kanállal veszik, a műszer munkadarabját egy eldobható Eppendorf -csőben lévő tartósító oldatban öblítik le.

Az anyag maximális eltarthatósága 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten.

Mintavétel férfiak anyagából:

Kaparás (kenet).

Az anyagot univerzális szondával veszik a húgycsőből. Ha szükséges, a kutatáshoz szükséges anyagot genitális fekélyekből veszik fel (HSV-II, Haemophilus ducrei kutatása).

A szonda munkadarabját, amely tartalmazza a vizsgálati anyagot, levágják vagy letörik, és tartósító oldattal ellátott eldobható Eppendorf -csőbe helyezik.

Az anyag maximális eltarthatósága 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten.

Prosztata lé:

A masszázs befejezése után a prosztata-levét 0,5-1 ml mennyiségben összegyűjtjük egy eldobható, száraz "Eppendorf" típusú kémcsőbe. Ha lehetetlen gyümölcslevet szerezni, közvetlenül a masszázs után a vizelet első részét (amely prosztata -levét tartalmaz) 10 ml mennyiségben kell összegyűjteni (lásd a fenti vizeletgyűjtési szabályokat).

A maximális eltarthatósági idő 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten.

Biológiai anyagok (vér) gyűjtése és tárolása ELISA (fertőzés) vizsgálatokhoz

A vérvételt üres gyomorban, a kubitális vénából végezzük eldobható tűvel (0,8-1,1 mm átmérőjű), 5 ml-es eldobható fecskendőbe vagy speciális „Venoject” vákuumrendszerbe (EDTA-val vagy anélkül). Amikor fecskendőbe húzzák, a belőle származó vért óvatosan (habképződés nélkül) egy eldobható „száraz” kémcsőbe vagy egy véralvadásgátlóval (6% EDTA oldat 1:19 vagy 3,8% arányú kémcsőbe) továbbítják. Na -citrát oldat 1: 9 arányban).

A szérum maximális eltarthatósága + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten 48 óra

A szérum maximális eltarthatósága -20 ° C hőmérsékleten a hosszú távú tárolás.

Biológiai anyagok (vér) gyűjtése és tárolása a szifilisz (Szifilisz RPR, Szifilisz TPHA, Szifilisz TPHA (félkvantitatív elemzés)) kutatásához, a hormonok koncentrációjának meghatározása a szérumban, tumormarkerek, autoantitestek ELISA-val és biokémiai kutatásokhoz

A vérvételt a következőképpen végzik:

Reggel éhgyomorra (dinamikus megfigyeléssel - mindig azonos órákban);

Csak „száraz” kémcsőben vagy speciális kereskedelmi vákuumrendszerben, véralvadásgátló nélkül.

A vérvételt üres gyomorban, a kubitális vénából végezzük eldobható tűvel (0,8-1,1 mm átmérőjű) 5 ml-es száraz kémcsőbe vagy speciális „Venoject” vákuumrendszerbe (véralvadásgátló nélkül). A fecskendővel történő leszívás nem kívánatos a hemolízis veszélye miatt.

A vért a gyűjtés napján be kell juttatni a laboratóriumba. A vérrel ellátott kémcsövet a vizsgálat előtt hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten tárolják.

A szérum maximális eltarthatósága + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten 48 óra.

A szérum maximális eltarthatósága -20 ° C hőmérsékleten a hosszú távú tárolás.

A savó csak egy leolvasztása megengedett.

Vérvétel a limfociták és a neutrofilek alpopulációinak és funkcionális aktivitásának meghatározásához

A vérvételt a következőképpen végzik:

Reggel éhgyomorra (5 ml vér).

A véralvadás megakadályozása érdekében véralvadásgátlót adnak a vérhez a gyűjtés során: 20 egység heparint / 1 ml vér. Jobb, ha szabványos heparin csöveket használunk (VAKUTAINER na-heparin vagy Li-heparin 5-7 ml zöld kupakkal a Becton Dickinson cégtől).

Vérvétel előtt egyenletesen ossza el a heparint a cső falán.

Amikor fecskendővel veszi be, a hemolízis elkerülése érdekében simán, nyomás nélkül engedje le a vért a kémcsőbe.

A gyűjtés után fordítsa meg többször a mintacsövet. Ne rázza vagy csavarja rázógépen.

A vért szobahőmérsékleten legfeljebb 48 órán keresztül kell tárolni

A szállítás során a vér hőmérsékletének +18 ° С - +24 ° С között kell lennie

Az immunglobulinok és a CEC meghatározásához a szérumban,

a vérvétel csak száraz kémcsőben történik !!!

Az átvételi és szállítási feltételek azonosak.

Biológiai anyagok (vér) gyűjtése és tárolása a vércsoport meghatározásához az AB0 rendszer és az Rh faktor szerint

A vérvételt üres gyomorban, a kubitális vénából végezzük eldobható tűvel (0,8-1,1 mm átmérőjű), 5 ml-es eldobható fecskendőbe vagy speciális „Venoject” vákuumrendszerbe (EDTA-val). Amikor fecskendőbe húzzák, a belőle származó vért óvatosan (habképződés nélkül) antikoagulánssal (6% -os EDTA -oldat 1:19 arányban vagy 3,8% Na -citrát -oldat 1: 9).

A vért a gyűjtés napján be kell juttatni a laboratóriumba. A vérrel ellátott kémcsövet a vizsgálat előtt hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten tárolják.

Biológiai anyagok (vizelet) összegyűjtése és tárolása a 17-KS napi kiválasztásának meghatározásához

A reggeli vizeletet eldobjuk, a következő vizeletrészeket, beleértve a másnapi reggeli részt, külön tálba gyűjtjük. Az összegyűjtött vizelet térfogatát összekeverjük és megmérjük (!). 50 ml vizeletet öntünk egy edénybe.

A minta szállítása a vizeletmennyiség jelzésével - ugyanazon a napon.

A hosszabb (több mint egy nap) tároláshoz fagyasztásra van szükség.

Vizsgálati anyag gyűjtése bakteriológiai kutatásokhoz

KÜLÖN UROGENITÁLIS VONAL.

A beteg kutatásra és anyaggyűjtésre való felkészítésének szabályai:

A nők kutatási anyagát a menstruáció előtt vagy 1-2 nappal a vége után kell bevenni. Az anyag szedése előtt ajánlott tartózkodni a vizeléstől 3-4 órán keresztül és a szexuális érintkezéstől.

A nők a vizsgálatra való megjelenésük napján ne mosakodjanak és végezzék el a külső nemi szervek vécéjét.

A vizsgálati anyagot speciális eldobható szondákkal, Volkmann kanállal, bakteriológiai hurokkal vagy tompa végű fülszondával veszik.

5-7 nappal az anyag mintavétele előtt le kell állítani a kemoterápiát és az orvosi eljárásokat.

A vizsgálati anyagnak mentesnek kell lennie a vér szennyeződéseitől.

Az urogenitális traktus lassú és krónikus fertőzései esetén ajánlott a következő provokációs módszerek egyikét alkalmazni:

biológiai: gonovakcin (500 millió mikrobiális test) beadása felnőtteknek egyszer, intramuszkulárisan, 3 évesnél idősebb gyermekek számára - 100-200 millió mikrobiális test. A gonovakcin bevezetése nem ajánlott 3 év alatti gyermekek számára;

termikus: 3 napos diatermia alkalmazása, hasüreg-hüvely-szakrális elektródák elrendezésével 30,40,50 percig, vagy induktotermiával 10,15,20 percig. A húgycsőből, a méhnyakcsatornából és a végbélből történő ürítést minden bemelegítés után egy órával kell elvégezni;

mechanikus: fém sapka felhelyezése a nők méhnyakára 4 órán keresztül, férfiak húgycsőjének masszírozása a buge -n 10 percig;

táplálék: sós, fűszeres ételek és alkohol fogyasztása 24 órával a vizsgálat előtt.

Kémiai provokációkat nem szabad végrehajtani, mivel káros hatással vannak egyes kórokozókra.

Az anyagot provokáció után és 24-48-72 óra múlva veszik fel.

Az anyag mintavételét szülész-nőgyógyász végzi, ha gyanítja a kóros folyamat fertőző jellegét.

A nyaki csatorna, az üreg és a méh függelékeinek tartalma általában steril.

HÚGYCSŐ

Az anyag bevétele előtt a húgycső külső nyílását steril sóoldattal megnedvesített tamponnal kell kezelni.

Gennyes váladék jelenlétében a kaparást azonnal vagy a vizelés után 15-20 perccel kell elvégezni; ürítés hiányában a húgycsövet szondával kell masszírozni, hogy felvegye az anyagot.

Nőknél, mielőtt a szondát a húgycsőbe juttatnánk, masszírozni kell a szemérem ízületét.

Helyezze be a szondát a nők húgycsőjébe 1-1,5 cm mélységig, a férfiak-3-4 cm-ig, és végezzen több forgó mozdulatot. Gyermekeknél az anyagot csak a húgycső külső nyílásából veszik.

VULVA, VAGINA SZELEP. A váladékot steril pamut törlővel veszik fel. A Bartholin -mirigyek gyulladása esetén szúrják ki őket, amikor a mirigy tályogját kinyitják, a tartalmat steril pamut törlővel veszik fel.

HÜVELY. A kutatáshoz szükséges anyagot steril tamponnal veszik a hátsó fornixból vagy a nyálkahártya kórosan megváltozott területeiről. Az oltóanyagot kézi vizsgálat előtt be kell venni.

EGYHÁZI CSATORNA.

Az anyag bevétele előtt el kell távolítani a nyálkát pamut törlővel, és a méhnyakot steril sóoldattal kell kezelni

Szükséges kolposzkóp használata.

Helyezze be a szondát a nyaki csatornába 0,5-1,5 cm mélyre.

A nyaki csatorna eróziójának jelenlétében steril sóoldattal kell kezelni őket, és az anyagot az egészséges és megváltozott szövet határától kell venni.

A szonda eltávolításakor teljesen ki kell zárni annak érintését a hüvely falával.

A vetéshez nyálkahártya -kaparást lehet használni, amely a méhnyakcsatorna falainak diagnosztikai küretálása során keletkezett.

MÉR Az anyagot speciális műszerekkel veszik fel, például fecskendő-szívóval, amely bevonattal van ellátva a szondán.

MÉK -KIEGÉSZÍTŐK

A méh függelékeinek gyulladásos folyamatában a fertőzés fókuszából származó anyagot (genny, váladék, szervdarabok) vagy műtéti beavatkozás, vagy amikor a kismedencében diagnosztikai szúrást végeznek, a hüvelyboltozatokon keresztül.

A szállítási környezetben végzett kutatáshoz felvett anyag legfeljebb 24 órán át tárolható + 4 ° C -on. A minta fagyasztása nem megengedett.

VIZELET

Az antibiotikum -kezelés megkezdése előtt el kell végezni a vizelet mikrobiológiai vizsgálatát. Az egészséges ember vizelete steril.

Reggel, a külső nemi szervek alapos vécéje után, a szabadon felszabaduló vizelet átlagos, 3-5 ml-es részét steril tartályba gyűjtik. Ha prosztatagyulladás gyanúja merül fel, 4 mintát kapunk: 3 adag vizeletet (az első és a középső rész spontán vizeléssel és az utolsó 5-10 percben a prosztata masszázs után), valamint a prosztata titkát a masszázs során.

A vizelet katéteres gyűjtése a húgyúti fertőzés kockázatával jár, ezért kerülni kell. A katéterezést olyan esetekben végzik, amikor a beteg nem tud vizelni, vagy megkülönböztetni a gyulladásos folyamatot a vesében és a hólyagban. Ebből a célból a hólyagot kiürítik, és 50 ml 40 mg neomicint és 20 mg polimixint tartalmazó oldatot fecskendeznek bele. 10 perc elteltével vizeletmintát vesznek a vizsgálathoz. Amikor a folyamat a hólyagban lokalizálódik, a vizelet steril marad. Amikor a vesék fertőzöttek, bakteriuria figyelhető meg.

A páciens vizeletét szuprapubikus lyukasztással lehet megszerezni Hólyag... Ez a vizeletgyűjtési módszer adja a legmegbízhatóbb eredményeket.

A vizelet mikrobiológiai vizsgálatát a betegtől való megérkezését követően a lehető leghamarabb el kell végezni, mert a vizeletben található mikrobák gyorsan szaporodnak szobahőmérsékleten, ami hamis eredményeket adhat a bakteriális szennyeződés mértékének meghatározásakor. E tekintetben a vizelet bakteriuria fokának vizsgálatakor a vizeletminta vétele és a laboratóriumban történő vizsgálat kezdete között legfeljebb 1-2 óra telhet el.

Amikor a vizeletet az urogenitális fertőzések kórokozóinak jelenlétére vizsgálják, a minta legfeljebb 18 órán át tárolható + 4 ° C -on.

A vizeletminták szállításakor figyelembe kell venni a környezeti hőmérsékletet.

BÉLDISBAKTERIÓZIS

Az antibakteriális és kemoterápiás gyógyszerekkel történő kezelés megkezdése előtt a bél dysbiosis anyagát (székletét) veszik.

A vérvizsgálat optimális ideje a begyűjtést követő 1-4 óra.

Nem kívánatos a vérvizsgálat a gyűjtés után 8 órával később, mert a sejtek egyes jellemzői megváltoznak: a leukociták térfogata csökken, az eritrociták térfogata nő, ami végső soron hibás mérési eredményekhez és az eredmények félreértelmezéséhez vezet. Csak a hemoglobin koncentrációja és a vérlemezkék száma marad stabil a vér tárolásának napján.

A vért nem szabad lefagyasztani. A K 2 EDTA -t tartalmazó kapilláris vért szobahőmérsékleten kell tárolni, és a gyűjtést követő 4 órán belül elemezni kell.

A minőségi kutatási eredmény biztosítása érdekében szigorúan ellenőrizni kell a minták tárolásának idejét és körülményeit az elemzés előtt.

Ha késleltetett elemzést kell végezni (nagy távolságra történő szállítás, a készülék műszaki hibája stb.), A vérmintákat hűtőszekrényben (4–8 o C) tárolják és 24 órán belül megvizsgálják. Mindazonáltal szem előtt kell tartani, hogy a sejtek duzzanata és a térfogatukhoz kapcsolódó paraméterek megváltoznak. Gyakorlatilag egészséges embereknél ezek a változások nem kritikusak és nem befolyásolják a mennyiségi paramétereket, de kóros sejtek jelenlétében az utóbbiak a vérvétel pillanatától számított néhány órán belül megváltozhatnak, vagy akár el is pusztulhatnak.

Közvetlenül a vizsgálat előtt a vért néhány percig alaposan össze kell keverni, hogy felhíguljon az antikoaguláns és a képződött elemek egyenletesen oszlanak el a plazmában. A minták hosszú távú állandó keverése a kutatásuk pillanatáig nem ajánlott a kóros sejtek esetleges sérülése és bomlása miatt.

A vérvizsgálatot automata analizátoron végezzük szobahőmérsékleten. A hűtőszekrényben tárolt vért először szobahőmérsékletre kell felmelegíteni, mivel alacsony hőmérsékleten a vér viszkozitása megnő, és a formázott elemek hajlamosak összeragadni, ami megzavarott keveréshez és hiányos lízishez vezet. A hidegvér vizsgálat a "riasztások" megjelenését okozhatja a leukocita hisztogram tömörítése miatt.

Ha hematológiai vizsgálatokat végeznek a vérvétel helyétől jelentős távolságban, elkerülhetetlenül problémák merülnek fel a kedvezőtlen szállítási körülményekkel kapcsolatban. A mechanikai tényezők (rázás, rezgés, keverés stb.), A hőmérséklet, a minták kiömlésének és szennyeződésének valószínűsége befolyásolhatja az elemzések minőségét. Ezen okok kiküszöbölése érdekében a kémcsövek vérrel történő szállításakor javasolt légmentesen lezárt műanyag csövek és speciális szállító izoterm tartályok használata. Szállítás közben a minta (a természetes anyaggal) és a beutaló űrlap érintkezése nem megengedett, a biológiai biztonsági szabályoknak megfelelően.

^ 4.3. Biológiai anyagok elfogadása és nyilvántartása

A vénás vérmintákkal ellátott csöveket a laboratóriumba szállítják a gyűjtés napján, biológiai anyagok szállítására szolgáló speciális zsákokban lévő állványokban, amelyekben a csöveknek függőleges helyzetben kell lenniük, és távoli szállításkor speciális tartályokban.

Az anyagot átvevő laboratóriumi alkalmazottnak ellenőriznie kell:

A beutalás helyessége: a beutaló nyomtatvány tartalmazza a vizsgázó adatait (vezetéknév, név és utónév, életkor, kórtörténeti szám vagy járóbeteg -kártya, osztály, diagnózis, elvégzett terápia);

A csövek címkézése vérmintákkal (azokat fel kell tüntetni a beteg kódjával vagy vezetéknevével, azonos a kóddal és vezetéknévvel az anyag kutatásra történő elküldésére szolgáló űrlapon). A laboratóriumi technikusnak rögzítenie kell a leszállított anyagot, megjegyeznie kell a csövek számát.

^ 4.4 A vér sejtösszetételének kiszámítása hematológiai analizátoron

A vér sejtösszetételének hematológiai elemzőn történő kiszámítását szigorúan az eszközre vonatkozó utasítások szerint kell elvégezni.

Ha hematológiai elemzőn dolgozik, akkor:

Használjon K-2 EDTA-val stabilizált vért az ajánlott arányban egy adott sóhoz és eldobható csövekhez hematológiai vizsgálatokhoz (egyszerű vagy vákuum);

Az elemzés előtt óvatosan, de alaposan keverje össze a kémcsövet vérrel (ajánlott a vérminták keverésére szolgáló eszköz - rotomix használata);

Használjon az előírt módon regisztrált reagenseket; amikor a reagenseket más gyártó termékeire cseréli, a műszert ellenőrizni és kalibrálni kell;

Indítsa el a készüléket, figyelve az öblítés minden szakaszát, elérve az összes csatorna mutatóinak nulla (háttér) értékét;

Ügyeljen a műszer valószínű szisztematikus hibákkal kapcsolatos üzeneteire: ne feledje, hogy az MCSS normál értéknél magasabb növekedése általában mérési hiba eredménye;

Ha hibát észlel, feltétlenül el kell távolítania az okot, ne dolgozzon a hibás készüléken;

Kövesse a megfelelő program szerinti minőségellenőrzési eljárást. az eredmény értékelésével;

Dolgozzon értelmesen, összehasonlítva a kapott eredményeket a beteg mintáinak klinikai jellemzőivel;

A mérések befejezése után alaposan öblítse le az analizátort;

A készülék hosszú időre történő leállításakor feltétlenül el kell végezni az összes megőrzési eljárást (ha lehetséges, szervizmérnökkel együtt);

Ha technikai problémái vannak, használja a karbantartási engedéllyel rendelkező cég szervizmérnökének segítségét; ne bízzon képzetlen személyzet munkájában.

A hematológiai elemzőn végzett munka megkezdésekor figyelembe kell venni az elemzett paraméterek mérésének linearitási határait. A minták értékelése az elemzett paraméterek értékeivel meghaladja a mérés linearitási határát, hibás eredményekhez vezethet. A legtöbb esetben a hipercitózisos minták elemzésekor az analizátor a "D" (higított) értéket jeleníti meg a mért paraméterérték helyett, ami azt jelzi, hogy szükség van a minta hígítására és az újramérésre. A hígítást addig kell végezni, amíg a következő két hígításon hasonló végső eredményt nem kapunk.

^ PÉLDA A táblázatban hiperleukocitózisban szenvedő beteg mintájának elemzését mutatjuk be három különböző hematológiai analizátoron.

3. táblázat

ThreeHyperleukocytosis számlálás három különböző hematológiai elemzőn

^ Hematológiai elemzők	Mintahígítás				Összérték
	^ Egész vér	1:1	1:3	1:4	WBC
1	D	274,5	274,5	143,1	715,5
2	322,6	253,2	177,7	141,8	709,0
3	D	D	168,3	139,1	695,5

A táblázatból kitűnik, hogy a teljes vér elemzésekor csak az egyik analizátor (2.) adott digitális értéket a leukociták számára, a másik kettő a minta hígításának szükségességét jelezte. A minta ezt követő lépésenkénti mérése három hígításban lehetővé tette, hogy minden eszközön csak 1: 3 és 1: 4 hígítás mellett lehessen hasonló végeredményt elérni. Így a teljes leukocita -szám 700,0 - 710,0 x 10 9 / l volt, ami több mint 2 -szer magasabb, mint a 2. elemzőben teljes vérben kapott kezdeti érték, és 1,5 -szeres 1: 1 hígítás esetén. elemzők.

1. 
   ^ Hematológiai elemzők kalibrálása

A kalibrálás az analizátor beállításának eljárására vonatkozik

Amely eléri a hiba szisztematikus komponensének nulla torzítását (nulla torzítás), vagy megerősíti, hogy a torzítás nulla, figyelembe véve a kalibrációs hibát. A hematológiai elemzők kalibrálása két fő módon végezhető el:

Egész vér;

Tanúsított értékekkel stabilizált vérminták alapján.

^ 5.1 Teljes vér kalibrálása

A teljes vér kalibrálása elvégezhető összehasonlítással olyan referencia -analizátorral, amelynek kalibrálását ellenőrizték és referenciaként tekinthetők.

A referencia -analizátorral való összehasonlításhoz történő kalibráláshoz 20 páciensből származó vénás vérmintát használnak, amelyeket véletlenszerűen választanak ki a laboratórium napi kutatási programjából a referencia -elemzővel. A vért vákuumcsövekbe kell gyűjteni K 2 EDTA véralvadásgátlóval. A referenciaelemzőn végzett elemzést követően a vércsöveket a laboratóriumba szállítják kalibrált műszerrel történő elemzéshez. A referencia és a kalibrált analizátoron végzett mérések közötti idő nem haladhatja meg a 4 órát. A kalibrált minták elemzését a kalibrálandó műszeren ugyanúgy kell elvégezni, mint a betegminták elemzését. A kapott eredményeket az 1. függelékben megadott formában táblázatba kell bevinni. Ezen eredmények alapján határozzák meg a megfelelő kalibrációs tényezőket, amelyek számszerűen megegyeznek a grafikon origóján áthaladó kalibrációs egyenesek meredekségi együtthatóival.

A kalibrálási tényezőket számítógépen számítják ki a Microsoft OFFICE csomag bármely verziójának EXCEL programjával. A kalibrációs tényezők kiszámításához ebben a programban egy szórási diagramot készítenek, ahol a mért értékeket az X tengely mentén, a referenciaértékeket az Y tengely mentén, egy regressziós vonalat állítják be az origón. a koordinátákról. A program megrajzol egy kalibrációs vonalat, és meghatározza annak meredekségét, amely a szükséges kalibrációs tényező. Ha durva hibákat észlel - azokat a pontokat, amelyek a grafikonon jelentősen távol vannak a kalibrációs egyenestől, azokat el kell távolítani a számításból (törölje a teljes sort az EXCEL táblázatból). Az így kapott kalibrációs tényezőt az 1. függelék táblázatába kell beírni, és a készülék kalibrálásának kézi beállítására szolgál a használati utasítás szerint.

1. 
   ^ Kalibrálás stabilizált vérmintákkal hitelesített értékekkel

Ez a kalibrálási módszer kereskedelmi kalibrációs és kontroll anyagokon alapul, amelyek stabilizált emberi vörösvértestek és rögzített emberi vagy állati sejtek mesterséges keveréke, amelyek utánozzák a leukocitákat és a vérlemezkéket. Mivel ezen anyagok összetevőinek biológiai tulajdonságai jelentősen különböznek a természetes vértől, a hematológiai paraméterek hitelesített értékei az adott elemzőtípustól függenek.

Amikor csak lehetséges, olyan kalibrátorokat kell használni, amelyeket a gyártó kifejezetten az adott típusú analizátor kalibrálására tervezett. A modern hematológiai kalibrátorok alapjel bizonytalanságai általában megfelelnek az orvosi követelményeknek. Azonban nem minden típusú analizátor rendelkezik ilyen kalibrátorral. Ezenkívül a korlátozott eltarthatósági idő miatt (általában nem több, mint 45 nap) nem mindig lehetséges a le nem járt minták befogadása.

A vezérlőanyagokat a gyártó nem kalibrálási célokra szánta: az értékek tűrései jóval szélesebbek, a minősítési és gyártásellenőrzési módszerek nem olyan szigorúak, mint a kalibrátorok esetében. A kalibrálás során a vezérlőanyagokat csak az eszköz metrológiai tulajdonságaival kapcsolatos információforrásként lehet használni.

Mindazonáltal szem előtt kell tartani, hogy ha mind a kontrollanyagokat, mind a kalibrátorokat kalibrálási célokra használják, a minta -előkészítés és az analizátorok működésének sajátosságai jelentős hatást gyakorolnak a szisztematikus hiba összetevőire. Ezeket a befolyásoló tényezőket nem lehet figyelembe venni a kereskedelmi anyagokkal történő kalibráláskor. Következésképpen minden esetben az elvégzett kalibrálást a betegmintákban kapott eredmények statisztikáinak (eritrocita indexek, normál értékek intervallumai) elemzésével kell ellenőrizni.

5.2.1 A hematológiai elemzők kalibrálásának gyakorisága

A kalibrálási intervallumokra vonatkozó követelményeket általában az analizátor használati utasításában találja. A kalibrálást általában javítás után vagy akkor kell elvégezni, ha jelentős eltérést észlelnek a belső laboratóriumi minőség -ellenőrzési eljárásokban.

5.2.2 Kalibrálási eljárás

A kalibrálási eljárást az analizátor használati utasításának megfelelően kell elvégezni.

5.2.3 A kalibrálási eredmény ellenőrzése

Ez a kontroll abból áll, hogy a kalibrációs mintát a kalibrálás elvégzése után azonnal elemzi. Az elvégzett kalibrációt akkor fogadják el, ha az elemzési eredmények megfelelnek a kalibrálási értékeknek, figyelembe véve az analizátor analitikai eltéréseit.

5.2.4 A kalibrálás ellenőrzése eritrocita indexek alkalmazásával

A kalibrálás ellenőrzésének és finomításának ez a módja kihasználja azt a tényt, hogy az eritrocita -indexek - MCHS, MCH és MCV - átlagértékei a betegek esetében meglehetősen kicsi, és ezért hatékonyan használhatók a kalibrálás ellenőrzésére és a további minőség -ellenőrzésre. Az átlagoláshoz ajánlott mintaszám 20. Bármely betegmintával meghatározható az átlagos MCHS, míg az anémiás betegeket ki kell zárni az átlagos MCH és MCV meghatározásához.

Sok modern hematológiai elemző beépített programokkal rendelkezik az aktuális átlag kiszámításához, ami nagyban leegyszerűsíti az adatfeldolgozást.

Az eritrocita -indexek célértékeit, nemtől függetlenül, 18–60 éves betegek 20 mintáján átlagolva, a 4. táblázat tartalmazza.

4. táblázat

Az eritrocita indexek célértékei

Ha a kapott átlagos értékek kívül esnek a kontroll tolerancián, ez azt jelenti, hogy az MCV vagy Hgb vagy RBC kalibrálást korrigálni kell.

A nem kielégítő kalibrálás okainak meghatározásakor, az eritrocita paraméterek kereskedelmi kalibráló / ellenőrző anyagok felhasználásával végzett vizsgálatának eredményei alapján, az anyagok hitelesített értékeinek megbízhatóságának következő értékelését kell figyelembe venni:

A legpontosabb és legstabilabb paraméter az idő múlásával az eritrociták koncentrációja;

A Hgb stabil paraméter, de függhet az alkalmazott reagensektől (például cianid- vagy cianidmentes);

A leg instabilabb paraméter az MCV. MCV érték hajlamos az anyag teljes eltarthatósági ideje alatt változni, meglehetősen széles értéktartományban. Az MCV kalibrálás finomításakor az átlagos vörösvértest -indexek elemzéséből kapott adatok elsőbbséget élveznek a stabilizált vérminták hitelesített értékeivel szemben.

Feltéve, hogy a vörösvértestek kalibrálása helyes, az 5. táblázat mutatja lehetséges okok az indexek átlagértékeinek kilépése a kontroll tolerancia tekintetében.

5. táblázat

Az eritrocita -indexek átlagértékeinek túllépésének okai

Eritrocitrikus indexek	Az index átlagos értéke	Az index átlagos értéke	Az index átlagos értéke	Az index átlagos értéke
MCHC	A határ alatt	A határ felett	A határ felett	A határ alatt
MCH	A tűréshatáron belül	A tűréshatáron belül	A határ felett	A határ alatt
MCV	A határ felett	A határ alatt	A tűréshatáron belül	A tűréshatáron belül
Ok	Túlárazott MCV	Alulbecsült MCV	Túl drága Hgb	Csökkentett Hgb

Vérmintavételi szabályok az emberi gének mutációinak meghatározásához PCR diagnosztika

Vér a PCR diagnosztikához... A vért üres gyomorra veszik a cubitalis vénából egy eldobható tűvel (0,8-1,1 mm átmérőjű) egy 2-5 ml-es, egyszer használatos fecskendőbe, majd EDTA-val vagy speciális vákuumrendszerrel, mint pl. Veccuette ”(EDTA -val, lila kupakkal), a csövet dugóval és megfordul többször (véralvadásgátlóval való keveréshez).

A vizsgálat előtt a vérrel ellátott kémcsövet hűtőszekrényben tárolják + 4 ° C -on. — + 8 ° C. Maximális eltarthatóság: EDTA -val ellátott csőben összegyűjtött vér gének mutációinak azonosításáraBRCA1 / 2, a címen tárolható+ 4 ° С - + 8 ° С 2 nap.

A vérvétel szabályai a PCR - fertőzéses vizsgálatok meghatározásához

A plazma előállításához a vért üres gyomorra vagy étkezés után 3 órával veszik a kubitális vénából egyszer használatos tűvel (0,8-1,1 mm átmérőjű) egy speciális vákuumrendszerbe (lila sapka - 6% EDTA). A csövet fedéllel le kell zárni, és többször óvatosan fel kell fordítani, hogy a csőben lévő vér alaposan összekeveredjen az antikoagulánssal (különben a vér alvad és a DNS / RNS izolálása lehetetlenné válik).

Ne használjon heparint véralvadásgátlóként!

Anyag- és előkezelt minták tárolási és szállítási feltételei

Teljes vérminták: - 20-25 ° C hőmérsékleten - 2 órán belül; - 2-8 ° C hőmérsékleten - 6 órán belül attól az időponttól számítva, amikor az anyagot nukleinsavak mennyiségi meghatározására vették; 12 órán belül - a nukleinsavak minőségi meghatározásához;

Ne fagyassza le a teljes vérmintákat!

Anyagmintavétel a HPV -fertőzések PCR -jéhez

A HPV vizsgálatához elegendő számú hámsejtre van szükség. a vírus intracelluláris ágens. Elfogadható mérsékelt szennyeződések jelenléte a nyaki nyálka és a vér formájában. Bizonyos esetekben lehetőség van anyag felvételére univerzális nőgyógyászati ​​szondával, azonban a lekaparott váladék térfogata kisebb lesz, és a sejtek száma is lehetetlen.

A nyálkahártyát és a hüvelyváladékot steril gézszivaccsal távolítják el a méhnyak felszínéről, a citokefe munkadarabját behelyezik a méhnyakcsatornába, és két -három teljes fordulatot végeznek az óramutató járásával megegyező irányban. A citoecsetet eltávolítjuk, és a felvett anyagot tartalmazó munkarészét szállítóközeggel ellátott kémcsőbe helyezzük. A citokefe munkadarabját legfeljebb 1 cm -re letörjük a citoecset műanyag alapjáról, és szállítóközeggel ellátott kémcsőben hagyjuk.

Ha lehetetlen letörni a citokefe vagy az univerzális szonda működő részét, a klinikai anyagot a lehető legteljesebben le kell mosni munkarészükből egy kémcsőbe szállító közeggel, azt nyomva belül csövek és 5-10-szer elforgatva az óramutató járásával megegyező és az óramutató járásával ellentétes irányban.

Elfogadhatatlan, hogy újrafelhasználható ollóval vágja le a citoecset működő részét vagy egy univerzális szondát-ez keresztfertőzéshez vezethet a klinikai anyaggal, és ennek eredményeként hamis pozitív eredményeket kaphat.

A biológiai anyaggal ellátott csöveket a tesztelésig fagyasztóban tárolják -16 ° C -on.

Anyagmintavétel a PCR diagnosztikához férfiaknál

Kaparás (kenet). Az anyagot univerzális szondával veszik a húgycsőből. Ha szükséges, a kutatáshoz szükséges anyagot a genitális fekélyekből veszik fel (a HSV-II kutatása). A szonda munkadarabját, amely a vizsgált anyagot tartalmazza, levágják vagy letörik, és egy eldobható Eppendorf -csőbe helyezik tartósító oldattal, vagy rotációs mozdulattal alaposan összekeverik, és a szondán lévő maradék folyadékot a cső falához nyomják, vegye ki a szondát (dobja egy fertőtlenítő oldattal ellátott edénybe).

A biológiai anyaggal ellátott csöveket a tesztelésig fagyasztóban tárolják -18 ° C -on.

Sperma. Gyűjtse össze eldobható, száraz Eppendorf csőben. A maximális eltarthatósági idő 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten; -18 ° C -20 ° C -on legfeljebb 2 hét.

Prosztata lé . A masszázs befejezése után a prosztata-levét 0,5-1 ml mennyiségben összegyűjtjük egy eldobható, száraz "Eppendorf" típusú kémcsőbe. Ha lehetetlen gyümölcslevet szerezni, akkor a masszázs után azonnal a vizelet első részét (amely prosztata -levét tartalmaz) 10 ml mennyiségben kell összegyűjteni.

A maximális eltarthatósági idő 1 nap hűtőszekrényben + 4 ° C - + 8 ° C hőmérsékleten; -18 ° C -20 ° C -on legfeljebb 2 hét.

Küldje el jó munkáját a tudásbázis egyszerű. Használja az alábbi űrlapot

Azok a hallgatók, végzős hallgatók, fiatal tudósok, akik a tudásbázist használják tanulmányaikban és munkájukban, nagyon hálásak lesznek Önnek.

közzétett http://www.allbest.ru/

"Nyizsnyij Novgorodi Orvosi Főiskola"

(GBOU SPO NO "NMK")

Teszt

Téma: "A bioanyagok fogadásának, címkézésének és nyilvántartásának megszervezése"

Befejezve:

a 221-IV. csoport hallgatója.

Stepanychev M.N.

Tanár:

Belova M.N.

N. Novgorod 2016

Bevezetés

1. Elméleti rész

1.1 Útmutatás készítése

1.2 A laboratóriumi vizsgálatok módjai

1.3 A klinikai laboratóriumi kutatásokhoz szükséges anyagok tárolásának és szállításának feltételei

1.4 Hatály

1.5 A bioanyagok futárral történő szállításának megszervezése és a futár felelőssége

1.6 A bioanyagok elfogadása a laboratóriumban

1.7 A bioanyagok és a beutalók átadása a laboratórium megfelelő részlegeire

1.8 A megrendelőlapok regisztrálása az üzemeltetők részéről

2. Gyakorlati rész

Következtetés

Bevezetés

A laboratóriumi vizsgálatok a beteg állapotának legérzékenyebb mutatói. A klinikai laboratóriumi diagnosztika régóta felismerte, hogy számos tényező befolyásolhatja a laboratóriumi vizsgálati eredményeket. Ezen tényezők között: helyesen szállított és hozzáértően megtervezett bioanyag minták és a kísérő dokumentáció. Ilyen kiegészítő információk hiányában (a laboratóriumi vizsgálatokat befolyásoló tényezők) a klinikus helytelenül értelmezheti a kapott eredményt, és helytelen lépéseket tehet a beteggel kapcsolatban.

Ennek az ellenőrzésnek a célja felhívni a figyelmet arra, hogy felül kell vizsgálni a biológiai anyagok befogadására és dokumentálására vonatkozó szabályokat. Az információk helyes alkalmazásának a felesleges kutatások csökkenéséhez, a költségek csökkenéséhez és a kutatási eredmények jobb megértéséhez kell vezetnie.

Cél:

A bioanyag fogadásának, címkézésének és nyilvántartásba vételének megszervezése.

Feladatok:

1. A bioanyag bevitelének vizsgálata.

2. Dokumentációjának elkészítése.

1. Elméleti rész

Jelenleg a laboratóriumi kutatási módszerek kulcsszerepet játszanak a betegségek diagnosztizálásában és kezelésében. A betegek vizsgálatakor nagy jelentőségűek a laboratóriumi diagnosztika szervezési szempontjai, a laboratóriumi vizsgálatok pontosságának és helyességének biztosítása, a stabil, műszakilag megbízható elemzési módszerek alkalmazása, valamint a kutatások minőségellenőrzése.

Az egészségügyi intézményekben a laboratóriumi módszerek meglehetősen széles arzenálját használják, és az egységes rutinmódszerek mellett ezeket is használják modern módszerek tanulmányok magas specifikussággal és információs tartalommal.

A betegségek diagnosztizálására szolgáló, nagyon specifikus laboratóriumi módszerek egészségügyi gyakorlatba történő bevezetése szabványosítást igényel a diagnosztikai folyamat minden szakaszában.

A preanalitikai szakaszban a hibák aránya a laboratóriumi hibák teljes számában 50% és 95% között mozog. A laboratóriumi kutatás preanalitikai szakaszában előforduló hibák leértékelik a laboratóriumi kutatások teljes további menetét, jelentős pénzeszközök elvesztéséhez vezetnek, hiteltelenítik a laboratóriumi módszereket a kezelőorvos szemében a kapott eredmények megbízhatatlansága miatt.

Minden típusú laboratóriumi kutatás esetében az előanalitikai szakasz egyesíti a folyamatokat a tényleges laboratóriumi elemzés előtt, amely a következőkből áll:

· A megkérdezettek gondos előkészítése;

· Bioanyagok beszerzése (vér, vizelet stb.);

· A bioanyag szállítása a laboratóriumba;

· A bioanyagok elsődleges feldolgozása a laboratóriumban;

· A bioanyagok forgalmazása és tárolása a laboratóriumban.

A preanalitikai folyamat ezen szakaszainak fő feladata, hogy biztosítsa a kutatásra felvett bioanyagok összetevőinek stabilitását (biztonságát), és minimalizálja azok minőségét megváltoztató különböző tényezők hatását.

E tekintetben a preanalitikai szakaszt veszik figyelembe.

1.1 Útmutatás készítése

Anyagfelvételkor az irányt helyesen kell kitölteni. A kémcsöveket és a kísérő dokumentumokat, címkéket nem szabad összetéveszteni. Az osztály és a sorozatszám a kémcsőben van feltüntetve. A kémcsövön vérrel a csoport és az Rh -hovatartozás meghatározásához - ezenkívül a beteg neve.

A bioanyag felvételekor az elemzés irányába fel kell tüntetni: (minden adat, figyelembe véve a Fehérorosz Köztársaság Egészségügyi Minisztériumának 2007. szeptember 28 -i, 787. számú, az elsődleges orvosi dokumentáció formáiról szóló végzését. )

· Beteg adatok - vezetéknév, keresztnév, utónév, születési dátum, nem, cím, kórtörténeti szám, diagnózis.

· Az orvos neve, aki a bioanyagot elemzésre küldte;

· A bioanyag bevételének dátuma és ideje;

· Röviden írja le az irányított bioanyagot (jelölje meg a bioanyag típusát), a bejelentett anyagnak nem megfelelő anyagot nem fogják megvizsgálni - például a nyál a köpet helyett, a szérum a plazma helyett;

· A bioanyag bevételének jellemzői (gyűjtési hely - vér, vizelet - térfogat, adag, gyűjtési idő);

· Minden szükséges kutatás, és nem csak " biokémiai elemzés vér ".

A beutalót elemzésre az orvos írja alá.

Kerülje az elemzések duplikálását.

1.2 A laboratóriumi vizsgálatok módjai

Minden vért csak centrifugában, kémiailag tiszta kémcsőben szabad a laboratóriumból venni. A vért a sürgősségi elemzési módban végzett kutatáshoz külön kell szállítani, nem szabad rutinszerű tesztekkel együtt figyelmeztetés nélkül az asztalra tenni. A sürgős elemzést végző osztály alkalmazottjának biztosítania kell, hogy az elemzést a laboratóriumi alkalmazott elfogadja.

Sürgős vizsgálatokat végeznek 2 órán belül, csak súlyos állapotú betegeknél, ha sürgősségi beavatkozás szükséges. A sürgős elemzés elvégzésére külön laboratóriumi asszisztenst és laboratóriumi diagnosztikai orvost rendelnek ki. A sürgős elemzés módjában végzett kutatások magasabb reagensfogyasztást és a szakemberek munkaidejét igénylik, és ennek következtében nagy pénzügyi költségeket igényelnek.

Jelenleg a sürgősségi elemző laboratórium a következő vérvizsgálatokat végzi vészhelyzetben:

A hemoglobin koncentrációjának meghatározása

A hematokrit kiszámítása

A vörösvértestek számának számlálása

A leukociták számának számítása

A leukocita képlet kiszámítása

A vérlemezkék számának számítása

A kötelesség -elemzést a munkanap során végzik el - az újonnan felvett betegek esetében, vagy amikor a beteg állapota rosszabbodik, ami nem igényel sürgősségi beavatkozást.

Megjegyzés: A normál laboratóriumi értékek az éhgyomri anyagra vonatkoznak. Ezért a sürgős és ügyeletes kutatások eredményeinek értelmezése nem állhat egyszerű összehasonlításban a normál értékekkel.

A rutinvizsgálatok az előző napra tervezett vizsgálatok, amelyekhez a laboratóriumba 7 és 9 óra között érkeznek anyagok. Végrehajtási idő - akár 6 óra, bizonyos esetekben hosszabb elemzési eljárás szükséges.

A munkavállalók laboratóriumi vizsgálatát az orvos irányításával végzik, aki felelős a munkavállalók orvosi vizsgálatáért. Minden más esetben felmérést fizetnek.

1.3 A klinikai laboratóriumi kutatásokhoz szükséges anyagok tárolásának és szállításának feltételei

A foglalkozási fertőzés megelőzése érdekében minden biológiai folyadékot potenciálisan fertőző anyagnak kell tekinteni, figyelembe véve a szállítás, tárolás és feldolgozás során történő kezelésre vonatkozó összes vonatkozó szabályt. A fertőző betegek bioanyagait külön meg kell jelölni és rendkívül óvatosan kell kezelni. A HIV -fertőzött betegek valamennyi bioanyagát a "120 -as kód" irányban kell feltüntetni, feltüntetve a kórtörténet számát.

A kapott biológiai folyadékot a lehető leghamarabb el kell juttatni a laboratóriumba. Ha szükséges meghatározni a glükózt és a sav-bázis állapot mutatóit, a vért azonnal el kell juttatni a laboratóriumba.

A szállítás és a feldolgozás minden szakaszában a vért kémcsövekben kell tartani, fedéllel lezárva, hogy megakadályozzák a párolgást és a mikrobák és különféle anyagok kívülről történő szennyeződését.

Szállításkor a csöveket függőlegesen, fedeleikkel felfelé kell elhelyezni, ami hozzájárul a minták biztonságához és felgyorsítja a vérrögképződést a szérum bevétele során, csökkenti a rázkódást szállítás közben és a hemolízis kockázatát.

A csöveket nem szabad tele tölteni. Az antikoagulánsok nélkül nyert teljes vért a laboratóriumba történő szállítás előtt nem szabad hűtőszekrényben tartani, hogy elkerüljék a hemolízist.

A centrifugálást legkésőbb a bioanyag bevétele után 1 órával kell elvégezni.

1.4 Hatály

Ez a szabványos működési eljárás (a továbbiakban: SOP) meghatározza a kezelőhelyiségből (az intézmény neve) és a laboratórium által kiszolgált egyéb intézményekből a laboratóriumba belépő bioanyagok befogadásának, nyilvántartásának, valamint a következetlenségek azonosításának és kiküszöbölésének eljárását. .

Ez az SOP a laboratóriumi asszisztens és a laboratóriumi kezelő számára készült.

1.5 A bioanyagok futárral történő szállításának megszervezése és a futár felelőssége

A hűtőszekrény hőmérsékletét, amelyet az autó utastérének kijelzőjén feltüntetnek, a futár rögzíti a "Journal of the temperature mode in the hűtőszekrények az autókban" folyóiratban, és ebben a naplóban a futár feltünteti nevét, regisztrációját az autó száma és az autó bioanyagból való indulásának időpontja közvetlenül az intézményekbe való utazás előtt ...

Az egészségügyi intézménybe érkező futár ezen intézmény nyilvántartásába megy, ahol különböző bioanyagokkal ellátott konténereket vesz fel. Minden tartály tartalmazza az intézmény nevét és a bioanyag típusát (vér, vizelet, ürülék, kenetekkel ellátott tárgylemez, kaparás). A futár vízszintesen helyezi el a tartályokat a gép hűtőszekrényében, amint az a fotón is látható.

A futár felelős a tartályok épségéért, biztonságáért, a megfelelő hőmérséklet -szabályozás biztosításáért a gép hűtőszekrényében (+4 - +8 С С), valamint az intézményekből szállított bioanyag biztonságáért. laboratórium. Az utazás során a futár figyeli az autó hűtőszekrényében lévő hőmérsékletet, amely megjelenik az autó kabinjába szerelt kijelzőn.

1.6 A bioanyagok elfogadása a laboratóriumban

A tartályok lefoglalása idején az autó hűtőszekrényében lévő kijelzőn feltüntetett hőmérsékletet a futár a "Journal of the hőmérséklet mode in the hűtőszekrények az autókban" című folyóiratban jegyzi meg a megfelelő oszlopban. az autó állami száma. És ugyanabban a folyóiratban a sofőr jelzi az autó érkezésének idejét biomateriallal az intézményektől.

A futár átadja a mentett laboratóriumi asszisztensnek a címkézett edényeket vérmintákkal, tamponokkal és kaparással.

Az irodában a mentős laboratóriumi asszisztens kinyitja a tartály fedelét, és eltávolítja onnan a kémcsöveket vérrel, csúsztatásokat kenetekkel és karcolásokkal, mappákat a kutatási utasításokkal.

A vércsöveket külön -külön állványokba rendezi a csövek típusa szerint (biokémiai, hematológiai és alvadási), valamint az állványokon feltüntetett intézmények nevei szerint.

1.7 A bioanyagok és a beutalók átadása a laboratórium megfelelő részlegeire

Az irodában a mentős - laboratóriumi asszisztens a biokémiai, immunológiai, koagulológiai vizsgálatokhoz használt kémcsövekkel ellátott állványokat a "bioanyag átvitele" jelzésű tartályokba helyezi, és centrifugálásra viszi.

Orvos asszisztens - laboratóriumi asszisztens felhívja a hematológiai és PCR osztályokat annak érdekében, hogy a megfelelő osztályok orvos asszisztensei vehessék fel a bioanyagot.

Ezután továbbítja a kutatási irányokat a regisztrációs operátoroknak.

1.8 A megrendelőlapok regisztrálása az üzemeltetők részéről

Regisztrációs eljárás:

- a kezelő beolvassa a vonalkódot a szkenner által, az üres irányba ragasztva;

- ezután a kezelő beírja a beteg útlevelének adatait a LIS -be: teljes név, születési idő, lakcím és egyéb adatok: a rendelés forrása (kötelező egészségbiztosítás, önkéntes egészségbiztosítás, készpénz, orvosi vizsgálat), intézmény száma, osztálya , a vizsgálatot elrendelő orvos teljes neve, diagnózis, MES kód (orvosi és gazdasági szabvány).

- ezt követően az üzemeltető beírja a LIS -be azokat a mutatókat, amelyeket a kezelőorvos írt elő, és elmenti a generált rendelést a LIS -be.

2. Gyakorlati rész

A 40 -es számú városi klinikai kórházat 1966 -ban nyitották meg, és jelenleg ez az egyetlen multidiszciplináris orvosi komplexum Nyizsnyij Novgorodban, amely magában foglalja: kórházat, szülészeti kórházat, születés előtti klinikát, gyermek- és felnőttklinikát. Ez a sebészeti osztály fő klinikai bázisa, a szakemberek továbbképzésének és szakmai átképzésének központja, a Nyizsnyij Novgorodi Állami Orvosi Akadémia, amely megnyitása óta a kórház alapján működik. A 40 -es számú kórház funkcionális jellemzője, hogy sürgősségi esetekben éjjel -nappal fogadják a szinte bármilyen patológiájú betegeket. A mentők naponta több mint 100 beteget szállítanak.

A kórházban és annak szerkezeti részlegein minden szükséges feltételt megteremtettek a betegek időben történő segítségnyújtásához és magas színvonalú kezelésükhöz. Itt a hagyományos módszereket magabiztosan használják és fejlesztik, a legújabb orvosi technológiákat aktívan vezetik be. A modern diagnosztikai berendezéseket mindenhol elsajátítják. Az elmúlt két évben az egészségügyi korszerűsítési program részeként a kórház 216 egység orvosi berendezést kapott, köztük modern endoszkópos, laboratóriumi, ultrahangos diagnosztikai berendezéseket, amelyek lehetővé tették a komplexebb beavatkozások elvégzését a hepatopankreatológiában, a koloproktológiában és a flebológiában.

Vezető szakértők aktívan részt vesznek az orosz és nemzetközi szintű speciális szemináriumok, konferenciák, szimpóziumok munkájában. laboratóriumi klinikai bioanyag

A 40 -es számú városi kórház egy általános klinikai bázis, ahol a modern tudományos fejlesztéseket és módszereket alkalmazzák a gyakorlatban. Itt sokáig és gyümölcsözően közös munkát végeztek a Nyizsnyij Novgorodi Állami Orvosi Akadémia Haladó Tanulmányok és Szakmai Átképző Központ sebészeti osztályával. Szervezője, Igor Leonidovich Rotkov professzor lett a sebészeti iskola alapítója, amelyen a kórház szinte minden sebésze keresztülment, és ma is továbbfejleszti a felhalmozott tapasztalatokat, új fejlesztéseket és technikákat vezet be. A városi phlebológiai központot a kórház alapján hozták létre. A gyermekgyógyászati ​​gasztroenterológia tudományos osztálya több évtizede a gyermeksebészeti osztályon dolgozik, mint a Nyizsnyij Novgorodi Gyermekgyógyászati ​​Intézet ága. A szülészeti kórház alapján szülészeti és nőgyógyászati ​​osztályok vannak az orvosok továbbképzésére és az NSMA hallgatóinak képzésére. Oroszország számos régiójának szakemberei itt fejlesztik képzettségüket. A gyakorló tudósok és kórházi orvosok közös munkája hozzájárul készségeik növekedéséhez, és az orvostudomány különböző területein megvalósuló innováció lehetővé teszi a páciensek kezelésében egyedülálló eredmények elérését.

A 40. számú Városi Klinikai Kórház munkájának eredményei alapján 9 doktori és 29 mestermunkát védtek meg. Több mint 70 szerzői jogi tanúsítványt és szabadalmat szereztek be a kórházi szakemberek által kifejlesztett műveleti módszerekre, diagnosztikára és használati modellekre.

A Nyizsnyij Novgorod Városi Orvosi Díj 2012 -es kitüntetését az orvosok csapata nagyra értékelte. A munka a sebészet egyik legsürgetőbb és legösszetettebb problémájával foglalkozik - az alsó végtagok flebotrombózisának kezelésével, az elmúlt ötéves megfigyelési időszakban, valamint sürgősségi és tervezett sebészeti ellátás biztosításával a flebotrombózisban szenvedő betegeknek egy városi flebológiai területen központ alapján GBUZ NO "GKB No. 40".

A szülészeti kórház, amely a kórház struktúrájának része, 205 ágyas, és a legnagyobb Nyizsnyij Novgorod régióban. Jelenleg regionális perinatális központként szolgál, évente 4500-5000 születést vállal. A szülészek és nőgyógyászok által végzett összes munka célja a vetélés és a hosszú terhesség előfordulásának számának csökkentése, a természetes szülés elérése és az újszülöttek túlélési arányának javítása.

2010 januárja óta az Egészségügyi Központ sikeresen működik a regionális szinten az egyik legjobbnak számító felnőttklinika falai között. Szakmai tapasztalatait a Központ vezetője mutatta be az Összoroszországi Fórumon - "Az egészséges nemzet az orosz jólét alapja".

2012 -ben, a rendelkezésre állás növelése érdekében egészségügyi ellátás egy távoli területen, egy felnőtt poliklinika szerkezetében megszervezték és sikeresen működnek a háziorvosi irodák.

Az intézmény több mint ezer alkalmazottja, köztük orvosok, ápolók, laboratóriumi asszisztensek, ápolók, technikai személyzet, kemény munkájával, törődésével és melegségével a humanizmus és az irgalom légkörét hozza létre, amely a GBUZ NO személyzetére jellemző. " GKB 40. szám ".

A gyakorlat során elsajátították a bioanyagok befogadásának és regisztrálásának teljes folyamatát.

1. A bioanyagok és formák elfogadása.

2. A bioanyagok kutatása

3. Az eredmények rögzítése az űrlapon

4. Az eredmény rögzítése az elemzési naplókba

5. A bioanyagok hasznosítása

Következtetés

A bioanyagok elfogadásának, címkézésének és nyilvántartásba vételének megszervezésének fő formája az időszakos külső és belső ellenőrzések. De ez a forma az ellenőrzés nem tekinthető hatékonynak. A laboratóriumi kutatások ezen szakaszának ellenőrzésének problémája ma is a modern laboratóriumi orvoslás egyik legsúlyosabb problémája.

A leghatékonyabb és leghatékonyabb lépés a szabványos feltételek megteremtése a páciens biológiai mintáinak vételére, szállítására és tárolására (vákuum vagy más rendszerek használatával). Az ilyen rendszerek gyakorlatba való bevezetése nem érinti a laboratóriumi kutatások minden szakaszát, és általában más szintre helyezi át a laboratórium szervezését. Használatuk nemcsak megkönnyíti a szervezést, és jelentősen elősegíti az előanalitikai szakasz szabványosítását, hanem megteremti a korszerű laboratóriumi rendszerek megvalósításához szükséges feltételeket is. Ha rendelkezésre állnak, az elemzők elsődleges kémcsövekként használhatók, ami nagyban leegyszerűsíti a laboratóriumi kutatások elemzési szakaszát.

Közzétéve: Allbest.ru

...

Hasonló dokumentumok

A mikrobiológiai kutatások fő feladatai a klinikai laboratóriumi diagnosztikában. Bakteriológiai laboratórium felszerelése, nagy teljesítményű automatizált technológia a mikroorganizmusok azonosítására, a mikrobiológiai diagnosztika szabványosítása.

absztrakt, hozzáadva 2010.09.10


A szifilisz átvitelének módjai - nemi fertőző betegség a bőr, a nyálkahártya sérüléseivel, belső szervek, csontok, idegrendszer a betegség stádiumainak egymást követő változásával. A fogászati ​​laboratórium sérülékenysége a fertőzéssel szemben.

előadás hozzáadva 2016.04.27


A klinikai és diagnosztikai laboratórium tevékenységének jellemzői modern körülmények között, a személyzet tevékenységének értékelése és a hatékonyságát növelő technológia. Az ápoló személyzet laboratóriumi munkájának leírása, optimalizálási ajánlások kidolgozása.

kurzus hozzáadva 2016.06.28


A termelést szabályozó orosz szabályozások gyógyszerek... A gyógyszerek minőségellenőrzésére szolgáló vizsgáló laboratórium felépítése, funkciói és fő feladatai. Az Orosz Föderáció jogszabályai a mérések egységességének biztosításáról.

kézikönyv hozzáadva 2013.05.14


Ismerkedés a modern fogsorok gyártásához használt anyagokkal. Az automatizált munkaszervezés sémájának tanulmányozása, amely lehetővé teszi a protézisek gyártását a CAD \ CAM technológia segítségével. A fogászati ​​laboratórium automatizálásának előnyei.

előadás hozzáadva 2015.10.11


A fogászati ​​laboratórium fő eleme a fogtechnikus munkaasztal. Az asztal kialakítása, felszerelése és világítása. Az irodában használt berendezés paraméterei. A legfontosabb kritériumok, amelyeken az öntőgép teljesítménye függ.

előadás hozzáadva 2016.03.14


Az alapvetően új és korábban nem használt klinikai vizsgálatok lefolytatásának jogalapja drogok... A klinikai kutatások etikai és jogi elvei, amint azt az Orvosi Világszövetség Helsinki Nyilatkozatában megfogalmazták.

előadás hozzáadva 2013.03.25


A mikrobiológiai laboratórium munkaszakaszai és az ezekre fordított idő. Normatív dokumentumok. A mikrobiológiai kutatásokhoz szükséges biológiai anyagminták gyűjtésének és szállításának általános követelményei. A teszteredmények értelmezése.

előadás hozzáadva 2016.04.26


A Kazah Köztársaság egészségügyi miniszterének "A farmakológiai és gyógyászati ​​készítmények klinikai vizsgálatokra és (vagy) tesztelésére vonatkozó utasítás jóváhagyásáról szóló" rendelete általános rendelkezései. A klinikai vizsgálatok etikai értékelésének elvei.

előadás hozzáadva 2014.12.22


Ismerkedés a skizofrénia megnyilvánulásának fő jeleivel. A beteg mentális, szomatikus és neurológiai állapotának elemzése. Megfontolás klinikai módszerek kutatás mentális betegség. Általános tulajdonságok laboratóriumi kutatások.

Ható

MU 4.2.2039-05

UTASÍTÁS

4.2. VEZÉRLÉSI MÓDSZEREK. BIOLÓGIAI ÉS MIKROBIOLÓGIAI TÉNYEZŐK

Technika a bioanyagok mikrobiológiai gyűjtésére és szállítására
laboratóriumok

Bevezetés dátuma 2006-07-01

2. A Bizottság AJÁNLOTT A JÓVÁHAGYÁSRA az Állami Egészségügyi és Higiéniai Szabályozásról a Szövetségi Fogyasztóvédelmi és Emberjóléti Felügyeleti Szolgálatnál, 2005. október 6 -án (3. jegyzőkönyv).

3. A Fogyasztóvédelmi és Emberjóléti Szövetségi Szolgálat vezetője, az Állami Egészségügyi Főorvos jóváhagyta és bevezette a cselekvésbe Orosz Föderáció G.G. Onischenko, 2005. december 23

5. ELSŐ alkalommal.

1 felhasználási terület

1 felhasználási terület

1.1. Az irányelvek meghatározzák a biológiai anyagok mikrobiológiai laboratóriumokba történő gyűjtésének és szállításának szabályait a laboratóriumi kutatási eredmények minőségének javítása, valamint a járványellenes és megelőző intézkedések, valamint a kórházi fertőzések megelőzése az egészségügyi személyzetben és a betegekben.

1.2. Az irányelveket a Szövetségi Fogyasztóvédelmi és Felügyeletszolgálat felügyelete alatt álló szervek és szervezetek használják, és felhasználhatják az egészségügyi hatóságok és szervezetek is.

2. Általános rendelkezések

2.1. A járványellenes és megelőző intézkedések időben történő és hatékony megszervezéséhez, a járványügyi felügyelet során a lakosság expozíciójának felméréséhez elengedhetetlen a fertőző források azonosítására vonatkozó megbízható adatok beszerzése.

2.2. A kifejlesztett technika a biológiai anyagok mikrobiológiai laboratóriumokba történő begyűjtésére és szállítására csökkenti az előanalitikai hibák szintjét, és javítja a laboratóriumi munka minőségét az eredmények objektiválásában.

2.4. Az iránymutatások felhasználhatók a laboratóriumban izolált és azonosított kórokozók antimikrobiális rezisztenciájának epidemiológiai felügyeletének elvégzésekor, az antimikrobiális gyógyszerek alkalmazásának optimalizálása, valamint a rezisztencia megelőzése, ellenőrzése és korlátozása terén hozott intézkedések helyi, regionális és nemzeti szinten.

3. A mikrobiológiai kutatásokhoz szükséges biológiai anyagminták gyűjtésének általános követelményei

3.1. Annak érdekében, hogy az egészségügyi személyzetet és a betegeket megvédje a fertőzésektől, amikor a bioanyagokból mintákat gyűjt és a laboratóriumba szállítja, szükséges:

ne szennyezze az edények külső felületét a minták gyűjtése és szállítása során;

ne szennyezze a kísérő dokumentumokat (utasításokat);

minimálisra kell csökkenteni a biológiai anyagmintával való közvetlen érintkezést egy egészségügyi dolgozó kezével, aki összegyűjti és eljuttatja a laboratóriumba;

használjon steril eldobható vagy erre a célra jóváhagyott tartályokat (tartályokat) a minták gyűjtésére, tárolására és szállítására a megállapított eljárásnak megfelelően;

minták szállítása hordozókban vagy dobozokban, külön fészkekkel;

tartsa be az aszeptikus feltételeket, hogy megakadályozza a beteg fertőzését az invazív intézkedések végrehajtása során;

gyűjtsön mintákat steril eldobható vagy üvegtartályokba (nem bioanyaggal szennyezett, repedések, törött élek és egyéb hibák nem károsítják)

3.2. A bioanyag mintákat az alábbiak szerint kell gyűjteni:

az antibiotikum terápia megkezdése előtt, ilyen lehetőség hiányában - közvetlenül a gyógyszerek újbóli bevezetése (bevitele) előtt;

az elemzéshez szükséges mennyiségben (súly, térfogat), mivel a kutatáshoz szükséges elégtelen mennyiségű bioanyag hamis eredményekhez vezet;

minimális anyagszennyezéssel normál mikroflórával, mert jelenléte a kapott eredmények téves értelmezéséhez vezet, például a köpet, az orr, a garat (garat), a nemi szervek stb.

3.3. Mintavételkor ügyeljen arra, hogy a laboratóriumban ne keletkezzen aeroszol, amikor kinyitják a bioanyaggal ellátott tartályt: a vér és más testnedvek mintáit habzás nélkül óvatosan átviszik a fecskendőből szárazra és / vagy megtöltik közeggel ( véralvadásgátló) edény.

3.4. A vizsgálat irányába tüntesse fel: a beteg vezetéknevét, nevét, utónevét; születési év; az osztály, amelyben található; kórtörténeti szám (járóbeteg -kártya); diagnózis; kutatási és kutatási célokra küldött anyag; az anyag átvételének dátuma és ideje (óra); antibakteriális (immun) gyógyszerek, ha a mintát az antibiotikum és / vagy immunterápia hátterében veszik; a mintát kutatásra küldő kezelőorvos (tanácsadó) vezetékneve, neve, utóneve. A boncolás során nyert bioanyagok utalásakor azt az osztályt is feltüntetik, amelyben a beteg meghalt.

3.5. A mintagyűjtés előtt, különösen invazív módszerek alkalmazása esetén, meg kell vizsgálni a páciensre és az előnyökre gyakorolt ​​kockázat valószínűségét, valamint az adott típusú bioanyag jelentőségét a klinikai diagnózis objektivitása és a folyamatban lévő vagy tervezett kezelési intézkedések értékelése céljából. figyelembe venni.

4. A bioanyag minták mikrobiológiai laboratóriumba történő szállítására vonatkozó általános követelmények

4.1. Az összes összegyűjtött mintát a beérkezést követően azonnal el kell küldeni a mikrobiológiai laboratóriumba, kivéve azokat az eseteket, amikor az Orosz Föderációban az erre a célra jóváhagyott szállítóközeggel ellátott tartályokat használnak a megállapított eljárásnak megfelelően.

Ez szükséges:

a kórokozók életképességének megőrzése és a különleges tenyésztési körülményeket igénylő mikroorganizmusok izolálása (Haemophylus stb.);

a gyorsan növekvő és aktív mikroorganizmusok túlszaporodásának megakadályozása;

az izolátumok kezdeti koncentrációinak arányának fenntartása mikrobiális társulások jelenlétében a mintában;

a minta érintkezési idejének csökkentése néhány helyileg alkalmazott antiszeptikummal, amelyek antibakteriális hatásúak lehetnek;

fertőző és gyulladásos betegség klinikai diagnózisának objektiválása és a terápia eredményeinek értékelése.

4.2. Megengedett alternatív módszerek alkalmazása a bioanyag laboratóriumba történő szállítási idejének növelésére.

A mintákat hűtőszekrényben, 2-8 ° C hőmérsékleten tárolja, az alább felsorolt ​​esetek kivételével.

4.2.1. Ha a mintát egy speciális szállítótartályban (szállítórendszerben) tárolják, amelyet a megállapított eljárásnak megfelelően használnak, amely steril eldobható cső, agar vagy folyékony szállítóközeggel és tamponszondával, amely a dugóba van helyezve és steril módon össze van csomagolva a csővel. Az ilyen tartályokban a mintákat szobahőmérsékleten (18-20 ° C) tárolják. Szállítási média, különleges sűrű aktív szénés nélküle 48-72 órán keresztül biztosítani kell a különleges tenyésztési körülményeket igénylő mikroorganizmusok életképességének megőrzését.

Az anaerobok és a székletflóra mintáihoz speciális tartályokat használnak szállítóközeggel, kémcsöveket Campylobacter és Helicobacter izolálására alkalmas közeggel, amelyeket a megállapított eljárásnak megfelelően használnak. Az ilyen környezetek anabotikus légkört teremtenek a mikroorganizmusok számára, ami segít csökkenteni az anyagcserét, gátolja a növekedést, megakadályozza a kiszáradást és a hulladéktermékek felhalmozódását.

Minden folyékony közegben összegyűjtött mintát alaposan összekeverünk a közeggel.

4.2.2. Amikor a vért húslevesben tenyésztik, a minta beérkezése után termosztátban tárolják 35-37 ° C hőmérsékleten.

Ha a mintákat speciális tartályokba gyűjtik kétfázisú közeggel történő későbbi vizsgálathoz, azokat szobahőmérsékleten (18-20 ° C) kell tárolni.

4.2.3. Amikor a hőmérsékletfüggő mikroorganizmusok (Neisseria sp.) Lehetséges jelenléte esetén a mintákat szobahőmérsékleten (18-20 ° C) hagyjuk.

4.3. Az aerobok és fakultatív anaerobok jelenlétére vizsgált minták szállításához használja:

eldobható steril száraz kémcsövek beépített tamponszondával (gumók) vagy tartályok szállító közeggel, amelyet az Orosz Föderációban a megállapított eljárásnak megfelelően használtak; megengedett a laboratóriumban elkészített, steril üvegből készült, gázáteresztő dugóval lezárt kémcsövek használata, beépített tamponszondával;

eldobható steril tartályok csavaros kupakkal (gázt áteresztő dugóval ellátott üveg megengedett)-vizelet-, köpet-, széklet-, hörgő-alveoláris öblítés, biopszia (szövetdarabok) mintájának gyűjtésére;

steril eldobható, csavaros kupakkal vagy üvegcsövekkel - steril folyadékok összegyűjtéséhez, broncho -alveoláris öblítéshez, elkülönítve a lefolyóktól vagy kaparásoktól;

steril Petri -csészék - hajminták gyűjtésére vagy az edény alján lévő jelölésekkel ellátott kaparások szállítására;

speciális steril nasopharyngealis és urogenitális szondák -tamponok alumínium tengellyel (tengelyátmérő - 0,9 mm) és kisméretű pamut vagy viszkózus törlőkendő a csúcson (tampon átmérő - 2,5 mm), dugóba szerelve, amely lezárja a steril eldobható üvegcsövet - minták a B. pertusis orrnyálkahártyájából és férfiaknál a húgycsőből.

4.4. Az anaerobok jelenlétére vizsgált minták szállítására speciális szállítóközeggel ellátott tartályokat és tioglikolos táptalajt tartalmazó kémcsöveket használnak; kémcsövek Campylobacter és Helicobacter izolálására alkalmas táptalajjal, amelyeket az Orosz Föderációban a megállapított eljárásnak megfelelően ezekre a célokra engedélyeztek. A folyékony közegben összegyűjtött mintát alaposan összekeverjük vele. A minták beszerzéséhez a következő technikákat javasoljuk:

az üregek aktív leszívására használt lefolyók elvezetését steril fecskendővel, sűrű dugattyúval, 2-4 ml térfogatban szívják fel; steril vattapálcikával borított steril tűt helyeznek a megtöltött fecskendőre, a felesleges levegőt eltávolítják a fecskendőből; vattapálcát csepegtetünk fertőtlenítő oldatba; a tű végét steril gumidugóba fecskendezik, és ebben a formában a fecskendőt az anyaggal a laboratóriumba szállítják;

a fertőző gócok és a lyukasztással kapott üregek tartalmát 2-4 ml térfogatban összegyűjtjük 2-, 5-, 10 ml-es fecskendők segítségével, sűrű dugattyúval; a felesleges levegőt eltávolítják a fecskendőből úgy, hogy steril vattapálcával lefedik a tűt, amelyet ezután fertőtlenítő oldatba öntenek; a tűt 70% -os etil -alkohollal megnedvesített törlőkendővel törölve fertőtlenítjük; a lezáráshoz a tű végét steril gumidugóba fecskendezik, és ebben a formában az anyaggal ellátott fecskendőt a laboratóriumba szállítják.

Nagy mennyiségű anyag (3 ml vagy több) összegyűjtésekor az anaerob baktériumok 24 órán át életképesek maradhatnak szobahőmérsékleten (18-20 ° C).

Ha csak néhány cseppet kell szétválasztani, akkor azt a fecskendőből egy kis tartályba vagy a szállítóközeggel ellátott kémcsőbe kell átvinni közvetlenül az átvétel után (a szállítóközeggel ellátott edényeket a laboratóriumban előző nap beszerezik).

A szövetdarabokat (biopsziás anyag) anaerob fertőzés gyanúja esetén steril, eldobható, csavaros kupakkal ellátott edényekbe kell gyűjteni (megengedett - üvegedényekben, földelt fedéllel), és azonnal szállítani kell a laboratóriumba.

4.5. A vírusok jelenlétére vizsgált minták szállításához a vírusok megőrzésére speciális tartályokat használnak folyékony közeggel.

5. Minták különböző típusú bioanyagokból és a beteg környezetéből

Asztal 1

A laboratóriumba minták szállítására használt edények

A klinikai anyag forrása és típusa	A minták szállítására használt tételek
	Az Orosz Föderációban, a megállapított eljárásnak megfelelően, erre a célra engedélyezett speciális szállítótartályok táptalajjal, semlegesítő antibiotikumokkal és reagensekkel, amelyek elpusztítják a vérsejteket, vagy anélkül; kétfázisú közeg az injekciós üvegekben
központi idegrendszer
Folyadék	Steril, eldobható csavaros tetejű csövek; steril üvegcsövek cellulóz vagy pamut géz dugóval
Anyag agytályoghoz és biopsziás anyag gyulladásos folyamatokhoz a központi idegrendszerben	Egy fecskendő tűvel a steril gumidugóba; cső tioglikolos közeggel, steril gumidugóval lezárva; szállítótartályok anaerobok tartósítására alkalmas közeggel
Alsó Légutak
A tüdő és a légcső biopsziás anyaga; a köpet természetesen köhög és indukálódik; kaparás a hörgőkből	Steril eldobható tartály csavaros kupakkal (köpet gyűjtésére); laboratóriumban készített steril üvegtartály
Légcsőszívás, hörgő-alveoláris öblítés, hörgőtöblítés	Steril egyszer használatos köpetgyűjtő tartály csavaros kupakkal; szorosan illeszkedő steril üvegcső
Aspirálja a transtrachealist és a tüdőt	Speciális szállítótartályok anaerob közeggel; fecskendő tűvel a steril gumidugóba; tartály tioglikolos közeggel; steril eldobható műanyag tartály csavaros kupakkal; szorosan illeszkedő cső
Felső légúti
Tamponok az orrból, a garatból, az orrgaratból, a külső fülből	Steril eldobható törlőkendő steril száraz csőbe (csőbe) vagy szállítótartályba helyezve megfelelő közeggel; szállítóedény vírusok ellen; a laboratóriumban összeállított steril üvegáru
Orröblítés, nasophagealis aspiráció	Steril eldobható tartály csavaros kupakkal; vírust szállító hajó
Tympanocentesis folyadék, sinusszívás, tűszívás	Egy tűvel ellátott fecskendő, amelyet manipuláció után fertőtlenítenek 70% -ban megnedvesített tamponnal etilalkohol, és beragadt egy steril gumidugóba; átviheti az anyagot a fecskendőből steril eldobható vagy üvegcsövekbe, vagy speciális edénybe, amelyben anaerobok szállítására alkalmas közeg van.
Az orr, a garat, a fül műtéte során nyert szövet	Steril eldobható tartály csavaros kupakkal; cső tioglikollal vagy más szállítóközeggel, szorosan lezárva steril gumidugóval; szorosan lezárt steril egyszer használatos műanyag vagy üvegcső
Kaparások a szemzug kötőhártyájából	Tamponok steril, zsírmentes üveglapokon; olyan anyag, amelyet speciális szállítótartályba vesznek fel táptalajjal vagy beoltják tápközegbe
Intraokuláris folyadék	Tamponok steril, zsírmentes üveglapokon; olyan anyag, amelyet speciális szállítótartályba töltenek anaerob közeggel vagy fecskendővel, tűvel, amelyet előzőleg 70% -os etil -alkohollal fertőtlenítettek, és steril gumidugóba helyeztek
Levehető, steril üvegrúddal vagy steril vattapálcával levéve az alsó átmeneti redő nyálkahártyájáról, a szemhéjak széléről, fekély esetén - a szaruhártyától (érzéstelenítés után), szögletes kötőhártya -gyulladás esetén - a szemhéjak	Steril eldobható vagy üvegcukor cukorralével, amelyben tamponszonda van felszerelve, vagy mintavételhez használt steril üvegrúd; speciális szállítótartály vírusok ellen
A könnycsepp titka	Eldobható steril tampon steril, száraz csőbe (tubuser) vagy üvegcsőbe szerelve
Genitourinary rendszer
A szabadon áramló vizelet átlagos része; mesterséges hólyag létrehozásához használt ileális csatornából; újraélesztő betegek katétereiből. Öblítés a hólyagból. A mintát kétoldali húgycső -katéterezéssel nyertük	Steril eldobható vizeletgyűjtő tartály csavaros kupakkal vagy steril eldobható tubus kupakkal; vagy egy speciális eldobható vizeletgyűjtő cső. Ha steril üvegcsövet használ cellulóz- vagy pamutgát-dugóval, ügyeljen arra, hogy ne áztassa be a dugót anyaggal (minta térfogata 10-20 ml)
Suprapubic aspirációs minta	Steril fecskendő tű nélkül, steril gumidugóval lezárva; steril fecskendő tűvel, amelyet előzőleg 70% -os etil -alkohollal fertőtlenítettek, és gumidugóba helyeztek
Anyag a női nemi szervekből
Folyadékok: magzatvíz, petevezeték, bartolin	Speciális szállítótartály közeggel anaerobok számára; tű nélküli fecskendő, steril gumidugóval lezárva; 70% alkohollal kezelt tűvel ellátott fecskendő, amelyet steril gumidugóba helyeznek (minta térfogata 1-2 ml)
Minták a nyaki csatornából, a húgycsőből, a hüvelyből	Egyszer használatos steril tampon, amelyet steril, száraz kémcsőbe (tubuser) vagy speciális közeggel ellátott szállítótartályba helyeznek; tamponszonda steril üvegcső cellulóz vagy pamut géz dugójába szerelve. Dia, előkészített kenettel a bakteriális nemi úton terjedő fertőzések és vírusok vizsgálatára. Cső aktívszén szállító közeggel a gonokokkok 48 vagy több órán keresztül történő megőrzésére
Anyagminták az endometriumból	Steril eldobható tartály csavaros kupakkal vagy kémcsővel, vagy szállítótartály anaerobok közegével; steril üvegáru
Külső nemi szervek anyaga	Steril fecskendő tű nélkül, steril gumidugóval lezárva; kenetet tartalmazó tárgylemez, fedőcédulával borítva a T. pallidum meghatározására; tamponszonda steril eldobható (tubuser) vagy üvegcsőbe szerelve; speciális szállítócső aktív szén közeggel a gonokokkok és a vírusok és a chlamydia szállítótartályainak megőrzésére; kenet az üveglapokon más nemi úton terjedő fertőzések kimutatására
Férfi nemi szervek anyaga
Urethral tamponok	Tamponszonda alumínium tengelyen (húgycső tampon szonda) steril eldobható (tubuser) vagy üvegcsövekbe szerelve; speciális szállítócső aktív szén közeggel a gonokokkok és a vírusok és a chlamydia szállító edényeinek megőrzésére; kenet az üveglemezeken más nemi úton terjedő fertőzések kórokozóinak kimutatására
Magömlés, spermium	Steril eldobható tartály csavaros kupakkal; steril cső vagy tubuser, eldobható vagy üveg
Az epididymis anyaga mellékvesegyulladással	Speciális szállítótartály anaerob közeggel vagy tartály tioglikolos közeggel; steril eldobható tartály csavaros kupakkal vagy steril üvegcső, cellulóz- vagy pamutgumi dugóval
Pénisz elváltozás	Tű nélküli fecskendő, steril gumidugóval lezárva; a T. pallidum kenetére szolgáló, fedőcédulával borított tárgylemez; tamponszonda steril eldobható (tubuser) vagy üvegcsőbe szerelve; szállítótartályok vírusok és chlamydia ellen; tamponok más nemi úton terjedő fertőzések kimutatására
Anyag a gonorrhoea gyanúja miatt
Kenések a végbélnyílásból, a nyaki csatornából, a húgycsőből, a hüvelyből	Tamponszonda steril eldobható (csöves) vagy üveg kémcsőbe szerelve; speciális szállítócső aktív szén közeggel a gonokokkok 48 órás vagy annál hosszabb ideig történő megőrzésére
Emésztőrendszer
Szájüreg	Tamponszonda steril eldobható (cső) vagy üveg kémcsőbe szerelt; steril eldobható vagy üvegtartály a kimosáshoz szájüreg
Gyomormosás vagy öblítőfolyadék; nyombél -aspiráció; szigmoidoszkópiával nyert minta; rektális biopsziás anyag	Steril eldobható tartály csavaros kupakkal; speciális steril tartály a köpet összegyűjtésére; steril üvegtartály; aspiráció - steril tűvel ellátott tűvel, előzőleg fertőtlenítve és steril gumidugóba helyezve
Rektális kenet	Egyszer használatos steril tampon steril steril száraz kémcsőbe (tubuser); vagy steril csövet speciális szállítóközeggel; rozsdamentes anyagból készült tampon, amely egy steril üvegcső cellulóz vagy pamut géz dugójába van szerelve
Ürülék a jelenléthez bélfertőzések("szétesés"), Helicobacter, Campylobacter	Steril cső tamponnal, sóoldatban glicerinnel; szállítótartály anaerob közeggel a székletmintákban, speciális közeggel aktív szénnel és anélkül a Campylobacter sp. és Helicobacter sp. tamponszonda száraz steril egyszer használatos kémcsőben (tubuser); steril üvegcső, amelyet tamponnal rögzítenek egy titánból, acélból és alumíniumból készült fémhuzalra. Fa tengelyű tampon használata nem megengedett
Ürülék a dysbacteriosis jelenlétére a mikrobák nemzetsége és fajösszetétele alapján ("a flórán")	Speciális szállítótartály anaerob közeggel a székletmintákban, speciális közeggel aktív szénnel és anélkül a Campylobacter sp. és a Helicobacter sp., az Orosz Föderációban, a megállapított eljárásnak megfelelően, ezekre a célokra történő használatra; tamponszonda egy kémcsőben sóoldattal glicerinnel steril eldobható vagy üveg kémcsőben; speciális eldobható steril tartály csavaros kupakkal; laboratóriumi szerelésű üvegtartály
Ürülékek a dysbiosis jelenlétére az izolált és azonosított mikrobák mennyiségi beszámolójával ("dysbiosis")	Speciális steril eldobható edények, csavaros kupakkal és spatulával az anyag összegyűjtéséhez és az oltáshoz szükséges minta vételéhez, standard tömeggel; laboratóriumba szerelt speciális steril üvegtartály
Bőr és bőr alatti szövet
Fekélyek, csomók (göbös megvastagodások), sekély, felszíni sebek (gennyes; égési sérülések); mély sebek vagy tályogok, csontok	Speciális steril eldobható edények csavaros kupakkal; steril 5 ml -es eldobható vagy üvegcsövek dugóval; tartályok speciális anaerob közeggel
A bőr alatti és lágy szövetek váladéka; lágy szövetek leszívják	Steril fecskendő tű nélkül, steril gumidugóval lezárva; fecskendő tűvel, amelyet korábban 70% -os etil -alkohollal fertőtlenítettek, és gumidugóba ragasztottak
Steril testnedvek, kivéve a vért, a cerebrospinális folyadékot, a vizeletet (lásd fent)
Folyadékok
Pleuralis, peritoneális, asciticus, ízületi, szinoviális	Steril eldobható tartály csavaros kupakkal; zárt fecskendő tű nélkül vagy 70% -os etil -alkohollal előzetesen fertőtlenített tűvel, és steril gumidugóba helyezve
Bioanyag PCR diagnosztikához
Vér; egyéb testnedvek	Steril eldobható csövek 1,5 ml -es dugóval, véralvadásgátlóval. A csövet 3-5 alkalommal megfordítjuk, hogy a minta összekeveredjen a véralvadásgátlóval. Szállítás a laboratóriumba - autoklávban sterilizálandó anyagokból készült állványban
Biopsziás anyag; kaparás; köpet és más típusú bioanyagok	Steril, eldobható, száraz Eppendorf típusú csövek és más hasonló csövek. Szállítás a laboratóriumba - egy speciális állványban, amely autoklávban sterilizálandó anyagokból készül
Minták a beteg környezetéről
Levegő	Steril eldobható Petri -csészék (= 90 mm) vagy üveg (= 100 mm) szilárd tenyésztőközeggel. Szállítás a laboratóriumba speciális szállítótartályokban
Mosás a pácienst körülvevő környezet tárgyairól
Sterilitási tesztek
Vér és vérkomponensek a gyűjtőosztályról	Az előkészített anyagot tartalmazó tartályokat speciális szállítótartályokban szállítják a laboratóriumba
Mosás orvosi műszerekből, az intenzív osztályon és az aneszteziológiai osztályokon, valamint a műtőkben használt berendezések tömlőiből; egészségügyi személyzet keze; vászon	Steril tamponok átlátszó csövekbe szerelve, tiszta, színtelen folyékony közeggel. A mintákat autoklávban sterilizálandó anyagokból állványokban szállítják a laboratóriumba
Sebészeti anyag: törlőkendők, szalvéták, turundák, vattapálcák fa tengelyen	Steril, átlátszó csövek dugóval, tiszta, színtelen folyékony közeggel, 3-5 steril üveggyöngyökkel. A mintákat autoklávban sterilizálandó anyagokból állványokban szállítják a laboratóriumba
Varróanyag: katgut, amelyet a műtőben tárolnak jód alkoholos oldatában	Steril kémcső (üveg dugóval) semlegesítő oldattal (nátrium -hiposzulfit)
Selyem, nylon, monomer szintetikus szálak, amelyeket műtőben tárolnak alkoholos oldatban	Steril cső dugóval, steril desztillált vízzel öblítőfolyadékként. A varratmintákat állványokban szállítják a laboratóriumba, hogy autoklávban sterilizálják
Mosás a beteg kezelési területéről	A mező feldolgozása előtt: átlátszó csövekbe, átlátszó folyékony tenyésztőközeggel töltve. A mező feldolgozása után: steril kémcső (üveg dugóval) semlegesítő oldattal (nátrium -hiposzulfit). Az anyag laboratóriumba történő szállítását állványokon végzik, amelyeket autoklávban sterilizálni kell
Minták a fertőzésellenes védelmi rendszer immunológiai tényezőinek meghatározására (a szervezet fertőzésellenes rezisztenciájának rendszere - CAIR)
Vér és más testnedvek a humorális védelmi tényezők meghatározásához	Eldobható fecskendők-kémcsövek (vacutainerek); steril eldobható csavaros tetőcsövek; steril üvegcsövek steril gumi, cellulóz vagy pamut géz dugóval. A mintákat egy speciális állványon szállítják a laboratóriumba, amelyet autoklávban sterilizálandó anyagokból készítenek. Ha pamut géz dugóval ellátott üveg kémcsöveket használ, ne áztassa őket szállítás közben
Vér és más testnedvek a sejtvédő faktorok meghatározásához	Steril, eldobható csavaros tetejű csövek; steril üvegcsövek, szorosan lezárva steril gumidugóval. Egyszer használatos csövek véralvadásgátlóval, centrifugálással. A laboratóriumba történő szállítást speciális állványon végzik, amely autoklávban sterilizálandó anyagokból készül
Tamponok bakteriális és vírusos antigének kimutatására (például szexuális úton terjedő fertőzés gyanúja esetén)	Steril zsírtalanított üveglap; a T. pallidum esetében a csúszdát fedőcédulával kell lefedni. A laboratóriumba történő szállítás eldobható edényben vagy steril eldobható vagy üveg Petri -csészékben történik speciális tartályokban

Jegyzet. A genny-, folyadék- és szövetmintákat speciális steril, egyszer használatos, csavaros kupakkal ellátott tartályokban kell szállítani a laboratóriumba. Tamponszondák - szárítsa meg steril eldobható csövekben (gumókban) vagy szállítóközeggel ellátott tartályokban, ha az anyagot nem lehet közvetlenül a mintavétel után szállítani a laboratóriumba. Erre a célra szállítóeszközök használhatók, pl. egyszer használatos kémcsövekbe csomagolva, steril törlőszondával, amelyet a megállapított eljárásnak megfelelően az Orosz Föderációban használnak. A tamponszondákat számos anyag felhasználásával állítják elő (készítik): magához a tamponhoz (pamut -géz, pamut, viszkóz, dakron), a tamponszonda tengelyéhez (fa, műanyag, rozsdamentes fém - titán, acél, alumínium) és sűrű agar táptalaj: szénnel és anélkül anaerobok számára.


Sok klinikailag jelentős anaerob, például a Clostridium perfringens, a Bacteroides fragilis meglehetősen toleráns az oxigén jelenlétével szemben, és nagy mennyiségű gennyben, folyadék- és testszövetmintákban, valamint speciális tamponszondán jól megmaradnak. szállító vagy tioglikol táptalaj.

Az oxigénre érzékenyebbek (például a fuzobaktériumok) a biológiai anyagmintában is jól megmaradnak, és ha az anyagot a begyűjtésétől számított 2-3 órán belül elvetik, akkor nem kell külön figyelmet fordítani a szállítási módra. A különleges tenyésztési körülményeket igénylő anaerobok nem élnek túl tamponszondán egy szállítótartályban olyan közeggel, amelyet nem anaerobok szállítására szántak, kivéve a speciális szállítóközeggel vagy tioglikollal ellátott tartályokat.

Ugyanakkor ezek a mikroorganizmusok 5-7 nappal hosszabbak, mint az az idő, amely alatt a legtöbb gyakorlati laboratórium inkubálja az aerobok és fakultatív anaerobok izolálására és azonosítására szolgáló anyaggal beoltott edényeket. Emiatt a szokásos gyakorlati laboratóriumokban alkalmatlannak tűnik rutinszerűen tesztelni az anaerobok jelenlétét speciális szállító anaerob tartályok és táptalajok használatával, és korlátozhatja magát tioglikol tápközeggel ellátott csövekre.

Minták gyűjtéséhez és szállításához az Orosz Föderációban a meghatározott eljárás szerint engedélyezett hordozókat, tartályokat, szerszámokat és anyagokat kell használni.

6. Szabályok és technikák különböző típusú biológiai anyagok mintáinak beszerzésére mikrobiológiai kutatásokhoz

Minden olyan mintát, amely invazív módszerek alkalmazását igényli, orvosnak kell beszereznie a pácienstől (kivéve a vérmintát, amelyet az eljárási nővér gyűjthet).

Ha szükséges anyagot gyűjteni tamponszonda segítségével nyitott kezelőfelületen, vagy egyéb invazív beavatkozás esetén, akkor megengedett a kész tamponszondák használata, amelyek nemzetközi biztonsági szintje nem alacsonyabb, mint a IIA. e célokat az Orosz Föderációban a megállapított eljárásnak megfelelően.

6.1. Vérminták

A vérben lévő biológiai ágensek (bakterémia, virémia stb.) Jelenlétének meghatározására szolgáló mintákat a perifériás vénák (gyakrabban a könyök vénái), az artériák vagy az újszülöttek sarokjából történő vénás punkcióval nyerik.

Mintagyűjtés a bent tartózkodó intravénás vagy intraarteriális katéterekből csak abban az esetben megengedett, ha gyanú merül fel a katéterrel összefüggő fertőzés jelenlétében, vagy ha nincs lehetőség a vénás punkcióval történő beszerzésre.

6.1.1. Akut szepszis, agyhártyagyulladás, osteomyelitis, ízületi gyulladás, akut, kezeletlen bakteriális tüdőgyulladás és pyelonephritis esetén 2 mintát veszünk két érből vagy két érszakaszból, mielőtt elkezdjük az antibiotikum terápiát.

6.1.2. Ha gyanítja az endokarditisz és a lassú szepszis jelenlétét, kis (10-30 CFU / ml) kórokozó koncentrációval a keringésben:

akut folyamat jelenlétében 2 mintát vesznek az edények két szakaszából (különböző erek) a testhőmérséklet emelkedése első 1-2 órájában (nem a hőmérséklet csúcsán!) és a kezdés előtt terápia;

szubakut vagy lassú lefolyás esetén az első napon 3 mintát veszünk 15 perces vagy annál hosszabb időközönként. Ha minden minta negatív, a vetés utáni második napon további 3 mintát gyűjtünk;

endokarditiszben szenvedő betegeknél, akik antibiotikumot kapnak, három naponként 2 külön mintát kell gyűjteni a terápia pozitív klinikai dinamikájával;

a fertőző endocarditis klinikai diagnózisának megerősítése, ha lehetetlen a szükséges számú vérmintát beszerezni a páciensből a mikrobiológiai elemzéshez, vagy ha a tenyésztési eredmények negatívak, vérmintákat küldenek, hogy tanulmányozzák a szervezet védekező rendszerének immunológiai tényezőit (anti -fertőző rezisztencia rendszer - CAIR); a laboratóriumba történő szállítást steril üvegben vagy eldobható kémcsövekben, fedéllel (dugóval) kell elvégezni a laboratóriumban előző nap;

ha a beteg veleszületett szívbetegségben (CHD) szenved, nem szabad elfelejteni, hogy a CHD a fertőző endocarditis prodroma, és a CAIR immunológiai tényezőinek meghatározása szerepel egy ilyen beteg vizsgálati algoritmusában.

6.1.3. Azoknál a betegeknél, akiknek komplex terápiája antibiotikumokat tartalmaz, 48 órán belül 6 mintát vesznek; a mintákat közvetlenül a gyógyszer következő adagjának bevezetése (bevétele) előtt kell gyűjteni.

6.1.4. Ha a betegnek ismeretlen eredetű láza van, akkor kezdetben 2 mintát vesznek különböző erekből (az ér két részéből), majd 24-36 óra elteltével további 2 mintát vesznek a testhőmérséklet emelkedése miatt (nem a hőmérséklet csúcsán!).

6.1.5. A vérmintavétel technikája. Az oltáshoz szükséges vérmintákat 2 személy gyűjti a beteg ágyánál vagy a kezelőszobában.

Mintavételhez tegye a következőket:

fertőtlenítse a szúráshoz kiválasztott edény feletti bőrfelületet: kezelje a bőrt 70% -os etil-alkohollal megnedvesített tamponnal, majd egy másik tamponnal, amelyet 1-2% -os jódoldattal vagy más, erre a célra engedélyezett fertőtlenítőszerrel megnedvesítettek. módon, körkörös mozdulatokkal, a középpontból kiindulva, 30 másodpercen belül;

várjon, amíg a kezelt terület megszárad. Tilos az edény tapintása a bőr feldolgozása után a tű behelyezése előtt;

ha kettős közeggel ellátott fiolákkal dolgozik: steril fecskendővel gyűjtsön 10 ml vért a felnőttektől, és 5 ml -t a gyermekektől; nyissa ki az üveget a szeszes lámpa lángja felett; adjon vért az injekciós üveghez a fecskendőből, miután eltávolította a tűt; égesse el a palack nyakát és parafáját alkoholos lámpa lángjában, zárja le az üveget parafával; óvatosan, nehogy átitatja a palack dugóját, körkörös mozdulatokkal keverje össze tartalmát.

Amikor kész injekciós üvegeket használ tápközeggel és reagensekkel, amelyek semlegesítik az antibiotikumokat és elpusztítják a vérsejteket, vagy anélkül, amelyeket az Orosz Föderációban az erre a célra jóváhagyott eljárásnak megfelelően engedélyeztek, a felnőttek 10-30 ml vért kapnak, gyermekek - 0,5-3,0 ml.

Ahol:

párhuzamosan a bőrfertőzés fertőtlenítésével a palackok kupakjait 70% -os etil -alkohollal kezelik (a jódoldatot tilos kupakok feldolgozására használni, amikor palackokkal dolgoznak, például Bactec, Vital és más hasonló palackokkal) az Orosz Föderációban e célra történő felhasználásra a megállapított sorrendben);

a felnőttektől nyert, egyenlő térfogatú vért, amelyet a tartály dugójába lyukasztottak, az „aerob” és „anaerob” tartályokba vezetik; a gyermekektől kapott vér - egy speciális "baba" palackba, lyukasztva ki a tartály dugóját.

6.1.6. A vénás punkció és a vértenyésztés után egy táptalajban lévő tartályban az esetleges irritáció (égési sérülések) megelőzése érdekében a jódmaradványokat 70% -os etil -alkohollal megnedvesített tampon segítségével kitörlik a beteg bőrfelületéről.

6.2. Minták a központi idegrendszer (CNS) fertőző és gyulladásos folyamataihoz

6.2.1. Folyadék. 4,0-5,5 ml cerebrospinális folyadékot kapott ágyéki punkció az L3-L4, L4-L5 vagy L5-S1 csigolyák közötti subarachnoidális térből, valamint az agy oldalsó kamráinak lyukasztásakor.

A mintavételt úgy végezzük, hogy lassan három csövet megtöltünk három adag anyaggal a laboratóriumi kutatásokhoz. Használjon steril csöveket szorosan záródó fedéllel (eldobható dugóval vagy üveggel, gumidugóval).

A három ágyéki lyukasztó anyagú cső közül mindig küldje el a legzavarosabb tartalmú csövet, általában a gyűjtőfolyadék második csövét.

Miután az anyagot az agy oldalsó kamráinak lyukasztásával megkapták, a tű eltávolítása után a fecskendőből frissen vett cerebrospinális folyadékot egy steril kémcsőbe kell vezetni az alkohollámpa lángján, a kémcső nyakán és a dugót alkoholos lámpa lángjában égetik (ha pamut gézzel vagy gumidugóval lezárt üveg kémcsővel dolgoznak), és zárt kémcső dugóval.

Minden agyhártyagyulladásra gyanús esetben a cerebrospinális folyadékon kívül anyagot gyűjtenek az állítólagos fertőző gócokból: a nasopharynxből, a középfülből, a vérmintákból származó tamponokat, és a cerebrospinális folyadékkal együtt elküldik a laboratóriumba. A jó értelemben A meningococcus hosszú távú (legfeljebb 48 órás) megőrzése az anyag törlőkendővel történő felvétele, és egy aktív szénnel vagy anélkül szállító közeggel ellátott kémcsőbe helyezés.

A mikrobiológiai kutatásokhoz szükséges folyadékot azonnal elküldik a laboratóriumba egy melegítőpárnán, hogy 35-37 ° C-os hőmérsékletet tartsanak. Ilyen lehetőség hiányában az italt egy szállítóközeggel ellátott edénybe gyűjtik, és reggelig hűtőszekrényben (4-8 ° C hőmérsékleten) hagyják, majd a laboratóriumba szállítják.

Ha szükség van virológiai vizsgálatok elvégzésére, a CSF-mintákat 2-8 ° C hőmérsékletű hűtőszekrénybe kell helyezni, vagy le kell fagyasztani, vagy szobahőmérsékleten tárolják, speciális folyékony közeggel ellátott edények segítségével.

6.2.2. Anyag az agy tályogjaiból. Tekintettel arra, hogy az esetek 90% -ában anaerobok nőnek a mintában, az anyagot leszívják a fókuszból, és egy, az Orosz Föderációban erre a célra engedélyezett anaerob közeggel ellátott tartályban, a megállapított eljárásnak megfelelően a laboratóriumba küldik, vagy egy fecskendőben, amellyel a mintát gyűjtötték, miután eltávolította a tűt, és a fecskendőt steril gumidugóval lezárta.

A mintát kézhezvételkor azonnal kézbesítik.

6.2.3. Biopsziás anyag. A mintákat a művelet során veszik, anaerob közeggel ellátott edénybe vagy steril, kémcsőbe, tioglikolos közegbe helyezve, steril gumidugóval lezárva.

Az anyagot azonnal elküldik a laboratóriumba.

6.3. Minták fertőző és gyulladásos szemfolyamatokhoz

A legtöbb szemmintát szemész gyűjti össze. Ezeket a mintákat be kell oltani táptalajra a beteg ágyánál vagy a kezelőszobában, vagy az orvosi rendelőben a felvétel során, és az oltott anyagot át kell vinni a laboratóriumba termesztésre, elkülönítésre, azonosításra és a kórokozók antibiotikum -érzékenységének meghatározására. . Az invazív és más agresszív módszerekkel vett mintákat párhuzamosan gyűjtik a kötőhártya -kenettel, amely ilyen esetekben kontrollként szolgál.

Előestéjén, 6-8 óra (éjszaka) minden gyógyszert és eljárást lemondanak.

A fertőző és gyulladásos folyamat specifikus klinikai megnyilvánulása vagy az orvos gyanúja esetén feltétlenül kenetet kell készíteni az érzéstelenítés előtt a chlamydia és a vírusok meghatározására, és a gyógyszereket laboratóriumba kell küldeni. A chlamydia és a vírusok megőrzése érdekében az anyagot szállítóközeggel ellátott tartályokba gyűjtik.

A váladékot steril üvegrúddal vagy steril tamponszondával gyűjtik össze: két vagy három mozdulattal az alsó átmeneti redő nyálkahártyája mentén, a szemhéjak szélétől végezzük; fekéllyel - a szaruhártyától (érzéstelenítés után), "szögletes kötőhártya -gyulladással" - a szemhéjak sarkaiból.

A könnycseppből származó váladékot gyengéd masszázs után steril tamponnal gyűjtik össze.

A pálcával és / vagy tamponszondával felvett anyagot szállítóközeggel ellátott tartályba vagy folyékony közeggel ellátott steril üvegcsőbe kell helyezni, és a laboratóriumba kell szállítani, ügyelve arra, hogy ne áztassa be a cellulóz- vagy pamutgumi dugót a cső.

Tamponszondák használata esetén előnyös, ha egyszer használatos edényeket használnak szállítóközeggel, vagy steril üvegcsöveket, amelyek pamut géz dugóval vannak ellátva, steril közeggel.

A gyulladásos folyamat kórokozójáról a legpontosabb információkat a kaparások mikrobiológiai elemzésével lehet megszerezni.

6.3.1. Conjunctivitis és blepharoconjunctivitis. Előző nap, 6-8 órára (éjszaka) minden gyógyszert és eljárást törölnek a kórházban lévő betegeknél.

A kötőhártya mintáit steril, előnedvesített viszkóz- vagy kalcium-alginát-szondatörlővel, egyszer használatos steril csőben vagy üvegcsőben kell összegyűjteni. A mintákat mindkét szemből külön tamponnal gyűjtjük két vagy három körkörös mozdulattal a nyálkahártya mentén.

Gumók ütésekkel minden szemből "jobb", "bal" és azonnal a laboratóriumba küldték.

A kaparás előtt 1-2 csepp érzéstelenítőt fecskendeznek be, például proparakain-hidrokloridot vagy más, amely rendelkezésre áll és engedélyezett az ilyen célokra az előírt módon.

Két vagy három rövid, éles mozdulattal egy irányba, speciális steril spatula segítségével lekaparják a kötőhártyát. A manipuláció során a szemnek nyitva kell lennie.

A minta összegyűjtésekor ügyelni kell arra, hogy ne érintse meg a szempillákat.

Készítsen legalább 2 tampont mindkét szemből úgy, hogy az anyagot egy tiszta, zsírmentes üveglapra viszi körkörös mozdulatokkal 1 cm átmérőjű területre.

A keneteket 5 percig 95% -os metil-alkoholban rögzítik egy speciális, szorosan záródó tartályban.

Azonnal a kémcsöveket szondával-tamponnal és szemüveget kenetekkel átviszik a laboratóriumba.

6.3.2. Bakteriális keratitis. Előző nap, 6-8 órára (éjszaka) minden gyógyszert és eljárást törölnek a kórházban lévő betegeknél.

Vegyen 2 mintát a kötőhártyából, a 6.3.1. Bekezdésben leírtak szerint, mert tenyésztésük eredményei hasznosak lehetnek a szaruhártya -szennyeződés forrásának meghatározásakor (gombás fertőzés gyanúja esetén egy mintát használnak).

Ha vírusfertőzés gyanúja merül fel, a kötőhártya -váladékot és a lekaparott anyagot egy speciális vírusszállító közegbe helyezzük.

Az érzéstelenítést a 6.3.1.

Gyűjtsön össze 3-5 kaparást a 6.3.1. Szakaszban leírt módszerrel.

Helyezze az összegyűjtött anyagot egy kicsi (5 ml) steril, csavaros kupakkal ellátott eldobható csőbe vagy steril gumidugós üvegcsőbe, amelyet közeggel töltenek meg.

Készítsen 2-3 kenetet egy üveglemezre, és szárítás után rögzítse a 6.3.1. Szakaszban leírtak szerint.

Azonnal vigye át az összes anyagot a laboratóriumba.

6.3.3. Bakteriális endoftalmit. Az üvegtest folyadékból (1-2 ml) mintát veszünk finom tűszívással, és mintát veszünk vitrectomia során.

Ezután tegye a következőket:

Miután kivette a tűt a fecskendőből, a tartalmát egy eldobható steril tartályba helyezzük, csavaros kupakkal vagy egy kémcsővel, amely szorosan le van zárva gumidugóval;

az anyagmintát a levegő eltávolításával és a tű eltávolításával a fecskendőben lehet hagyni, zárja le a fecskendőt steril gumidugóval;

mintát vesz a kötőhártyából a 6.3.1. bekezdésben leírtak szerint;

minden anyag azonnal a laboratóriumba küldték.

6.3.4. Preseptális cellulit. A bőrt 70% -os etil-alkohollal és 1-2% jódoldattal vagy jodoformmal vagy más rendelkezésre álló fertőtlenítőszerrel kezelik az előírt módon.

Nyitott seb hiányában a felső vagy alsó szemhéjat átszúrják az anyag összegyűjtése érdekében.

Nyitott seb jelenlétében gennyes anyagból mintát veszünk egy tűvel ellátott fecskendővel.

Készítsen kenetet a tárgylemezre a 6.3.1.

Tegye át az összegyűjtött anyagot egy szállítótartályba anaerobok számára alkalmas közeggel, vagy fecskendőben hagyva, amelyet a levegő eltávolítása és a tű eltávolítása után dugóval kell lezárni.

Összegyűjtött anyag és ütések azonnal a laboratóriumba küldték.

6.3.5. Orbitális cellulit. Gyűjtse össze az aspirátumot a területről a 6.3.2. Bekezdésben leírt módszer szerint.

Gyűjtsünk mintát a kötőhártyából, és készítsünk kenetet egy üveglemezre, a 6.3.1. Bekezdés szerint.

A laboratóriumba történő szállításhoz használja a 6.3.3. Pontban leírt anyagokat.

A 6.1. Pontban leírt módszer szerint vegyen vérmintát a páciensből. A vérmintákat, az összes összegyűjtött anyagot átviszik a laboratóriumba.

6.3.6. A könnymirigy gyulladása (dacryoadenitis).

Gyűjtse össze a gennyes tartalmat tamponszondával, a 6.3.1. Bekezdés szerint.

Ne használja a tűszívó módszert, hogy ne sértse meg a könnymirigy épségét.

A tamponszondát és a kenetekkel ellátott tárgylemezeket átviszik a laboratóriumba.

6.3.7. A könnyzsák gyulladása (dacryocystitis). Vegyen mintát a kötőhártyából, a 6.3.1.

Masszírozza és nyomja meg a könnyzsákot, hogy mintát kapjon a beoltáshoz és a kenet elkészítéséhez, vagy más módszerrel tűvel ellátott fecskendővel gyűjtse össze a váladékot.

Helyezze az összegyűjtött váladékmintát szállítótartályokba a korábban leírtak szerint, és szállítsa a laboratóriumba.

6.3.8. Canaliculitis. Nyomja le a szemhéj belsejét, és húzza ki a gennyet.

Ezután a munkát az ebben a részben korábban leírt módszerek szerint végezzük.

Ha van egy speciális osztály (klinika) egy orvosi és profilaktikus szervezetben, minden növényt a beteg ágyánál készítenek a laboratóriumban beszerzett táptalajokon. A beoltott anyagot az előkészített kenetekkel együtt átviszik a laboratóriumba.

6.4. Minták fertőző és gyulladásos fülfolyamatokhoz

6.4.1. A külső fül károsodása esetén a bőrt 70% alkohollal kezelik, majd steril sóoldattal öblítik. A fókuszból származó ürítést steril, eldobható csöves tamponcsövön vagy szállítóközeggel ellátott csöveken, vagy steril üvegcsőbe rögzített, dugóval lezárt tamponon, speciális közeggel vagy anélkül kell összegyűjteni. A tampont kémcsőbe helyezzük, és a laboratóriumba szállítjuk.

6.4.2. A középső és belső fül sérülése esetén a műtét során keletkezett szúrásokat és egyéb anyagokat összegyűjtik. Az elemeket zárt fecskendőben szállítják a laboratóriumba, előzőleg eltávolított levegővel. Szövetminták - az Orosz Föderációban erre a célra jóváhagyott anaerob közeggel ellátott szállítótartályban, a megállapított eljárásnak megfelelően, vagy csavaros kupakkal ellátott, eldobható steril tartályban. Lehetőség van steril üvegcső használatára is, steril gumidugóval lezárva.

6.4.3. A dobhártya timpanocentézisét csak abban az esetben végzik a középfül -fertőzések mikrobiológiai diagnosztizálására, ha a beteg nem reagál a korábbi terápiára, vagy hurutos középfülgyulladás tompa lefolyásával, még akkor sem, ha a kiálló vérben láthatóvá válik a váladék (vetés) a nasopharynxből pozitív az esetek kevesebb mint 90% -ában).

Mintavétel céljából a külső csatornát 70% -os etil -alkohollal megnedvesített törlőkendővel tisztítják, majd steril sóoldattal kezelik.

Fecskendővel folyadékot gyűjtünk a dobüregből. A mintát steril, eldobható edényben, csavaros kupakkal vagy zárt fecskendőben szállítják a laboratóriumba, előre leeresztett levegővel.

Ha a dobhártya megsérült, akkor az anyagot egy tamponszondával gyűjtik össze egy spekulum segítségével. A tampont egy steril eldobható csőbe (csőbe) vagy tartályba helyezzük szállító közeggel (megengedett a steril üvegcső használata közeggel vagy anélkül), és ebben a formában szállítják a laboratóriumba.

6.5. Minták a légúti fertőző és gyulladásos folyamatokhoz

6.5.1. Felső légúti. Ha a beteget diftéria, szamárköhögés, chlamydia, mikoplazmózis, legionellózis, gonorrhoea gyanúja jellemzi, a laboratóriumi dolgozókat a minta szállítása előtt tájékoztatják, hogy felkészüljenek az ilyen típusú anyagok elemzésére.

6.5.1.1. Az orrüreg elülső szakaszainak nyálkahártyájából vett mintát egy steril szondatörlővel, steril eldobható csőbe (tubuser) vagy speciálisan steril üvegcsőbe szerelve kell összegyűjteni:

vegye ki a tampont a kémcsőből, helyezze be a jobb orrlyukba, és forgassa el az anyagot az orr szárnyaiból és az orrnyílás felső sarkából forgó mozdulatokkal;

ismételje meg a manipulációt a bal orrlyukhoz;

Helyezze a tampont egy kémcsőbe, és vigye a laboratóriumba.

Az ily módon nyert minták hasznosak a Staphylococcus aureus behurcolásának meghatározásához orvosi szakemberek, a kórházi fertőzés kórokozóinak jelenléte, valamint a felső légutak nyálkahártyájának diszbiotikus rendellenességeinek jellemzése a betegek átfogó klinikai és immunmikrobiológiai vizsgálata során, tudományos és gyakorlati laboratóriumokban.

Ha gyulladás vagy fekély gócok vannak az orrüregben, akkor az anyagot külön fültisztító pálcikával gyűjtik össze a fókuszból (gócokból).

6.5.1.2. A nasopharynxből származó aspirátumokat összegyűjtjük a streptococcus pyogenic, a meningococcus, a diftéria és a pertussis kórokozóinak szállítására, valamint a S. pneumoniae és a H. influenzae antimikrobiális rezisztenciájának epidemiológiai vizsgálatai során:

szívóanyag a nasopharynxből;

Vigye át az anyagot egy csavaros kupakkal ellátott steril eldobható edénybe vagy egy speciális steril csőbe, amely gázt áteresztő cellulóz- vagy pamut-géz dugóval rendelkezik, ügyelve arra, hogy ne áztassa be klinikai anyagmintával.

6.5.1.3. Orr -garat tampon. Az anyagot összegyűjtik a meningococcus hordozásának meghatározására és a szamárköhögés diagnosztizálására.

Óvatosan forgó mozdulatokkal az alsó orrjáratban felváltva mindkét orrlyukba behelyezzük az orrgaratba egy pamut, viszkóz vagy kalcium -alginát tampon szondát az orrgaratba. Ugyanakkor az orrszárnyakat a tamponhoz és az orrsövényhez nyomják a nyálkahártyával való szorosabb érintkezés érdekében.

Helyezze a tampont egy steril csőbe, és vigye a laboratóriumba.

6.5.1.4. Az orrmosást nemcsak bakteriális, hanem túlnyomórészt vírusos fertőzés jelenlétének meghatározására is használják.

Figyelmeztesse a beteget, hogy az eljárás során ne nyelje le.

A páciens fejét körülbelül 70 ° -os szögben fel-vissza helyzetbe helyezzük, minden orrlyukba 5 ml steril sóoldatot fecskendezünk, a betegnek 3-5 másodpercig ebben a helyzetben kell lennie.

Az anyag összegyűjtéséhez engedje előre a beteg fejét, hogy a folyadékot az orrlyukakból egy steril eldobható edénybe engedje, vagy szívja fel a folyadékot úgy, hogy mindkét orrlyukba gumi lefolyót helyez.

Helyezzen egyenlő mennyiségű öblítést egy vírustranszport -közeggel ellátott tartályba, vagy ezt az adagot steril, eldobható edényben.

6.5.1.5. Sinus punkció. A fecskendő aspirációs technikáját alkalmazva egy speciálisan képzett, tapasztalt orvos vagy fül -orr -gégész nyer anyagot a maxilláris frontális vagy más orrmelléküregekből. A fecskendő tartalmát anaerob szállítóközeggel ellátott edénybe vagy tioglikolos közeggel ellátott steril csőbe helyezzük. Hagyja az anyagot a fecskendőben, és steril gumidugóval szállítsa be a laboratóriumba.

6.5.1.6. Mintavétel a garat nyálkahártyájából (garat).

Nem szabad anyagot gyűjteni a garatból (garatból) gyulladt epiglottissal, mivel az eljárás súlyos légúti elzáródáshoz vezethet.

Amikor mintát vesz a garat (garat) nyálkahártyájából, ne érintse meg tamponnal az arc, nyelv, íny, ajkak nyálkahártyáját, és ne gyűjtsön nyálat, mivel ez az anyag jellemzi a nyálkahártyát. szájüreg, vagyis a gyomor -bél traktus felső része.

A garatból (pharynx) származó tampont éhgyomorra vagy 3-4 órával étkezés után gyűjtik. Mintavétel előtt a páciensnek öblítse le a száját meleg forralt vízzel.

Mintavételhez steril spatulát vagy tampont használjon: távolítson el egy viszkózus tampont egy steril eldobható csőből (csőből), vagy használjon egy steril üvegcsőbe szerelt laboratóriumban készített tampont. A viszkózfejű tamponszonda használata előnyösebb, mert a viszkóz kevesebb folyadékot és több sejtes anyagot szív fel.

Egyik kezével a páciens nyelvét steril spatulával nyomja meg.

A másik kezével anyagot gyűjtenek, felváltva kezelve a jobb mandulát, a jobb nádívet, a bal mandulát, a bal nádívet, az uvulát tamponnal, érintse meg a garat hátsó részét tamponnal az uvula szintjén.

Az így kapott minták hasznosak a nosocomialis fertőzés kórokozójának jelenlétének meghatározására, valamint a felső légúti nyálkahártya diszbiotikus rendellenességeinek jellemzésére a betegek komplex klinikai és immunmikrobiológiai vizsgálata során, tudományos és gyakorlati laboratóriumok.

A nyálkahártyán fellépő gyulladásos vagy fekélyes gócok jelenlétében különösen óvatosan kezelik a mintagyűjtést, és külön tamponnal összegyűjtenek további anyagot a fókuszból (gócokból).

Helyezze a tampont egy steril eldobható vagy üvegcsőbe, és vigye a laboratóriumba.

6.5.1.7. Ha diftéria gyanúja merül fel, a laboratóriumi dolgozókat tájékoztatják, jelezve a diagnózist az irányban.

Légzőszervi kóros folyamat jelenléte esetén az anyagot egyidejűleg gyűjtik a nasopharynx és a garat nyálkahártyájából a korábban bemutatott módszerek szerint.

Ha a diftéria bőrformáját gyanítják, az anyagot összegyűjtik a bőrről, valamint a garat (garat) és a nasopharynx nyálkahártyájáról, és minden mintát a laboratóriumba szállítanak.

6.5.2. Alsó légúti. Az alsó légúti gyulladásos folyamatok mikrobiológiai diagnózisa komoly nehézségeket okoz, mert A gyűjtés során a minta szennyeződhet a felső légutakat kolonizáló mikroorganizmusokkal. Ez az ökológiai rés meglehetősen bőségesen tele van opportunista mikrobákkal, különösen dysbacteriosis jelenlétében (minőségi - fajösszetétel és / vagy mennyiségi - a fajok CFU / ml -ben lévő koncentrációja az alanyok legyengült és / vagy immunhiányos kontingensében).

Emiatt az alsó légutakból származó anyagmintákat különösen gondosan gyűjtik össze, hogy pontos információkat szerezzenek az etiológiai ágensről. Amikor invazív módszereket alkalmaznak a mintagyűjtéshez (ha ez nem történik meg a művelet során), az alkalmazott műszerek áthaladnak a felső légutakon, és valós lehetőség van a mélyebb lókuszok mikroorganizmusokkal - a felső légutak lakóival - történő beültetésére.

6.5.2.1. Köpet.

Szabadon választható (köptető) köpet- a reggeli összejövetel előnyösebb.

A mintagyűjtés előtt a betegnek, ha lehetséges, meg kell mosnia a fogait, és öblítse le a száját és a torkát meleg forralt vízzel, ha a beteg nem tudja ezt megtenni, akkor a szájüregi vécét orvosi dolgozók végzik. .

Figyelmeztesse a beteget, hogy ne gyűjtsön nyálat vagy nasopharyngealis váladékot egy tartályba.

Köpetminta, amelyet a mély köhögés, speciális steril, eldobható, csavaros kupakkal ellátott edénybe vagy speciálisan előkészített steril üvegedénybe kell gyűjteni.

A köpetmintát a laboratóriumba küldik.

Indukált köpet (elsősorban Mycobacterium tuberculosis és Pneumocystis yiroveci gyanúja esetén ajánlott)- a reggeli összejövetel előnyösebb.

A mintagyűjtés előtt a betegnek, ha lehetséges, meg kell mosnia a fogait, és öblítse le a száját és a torkát meleg forralt vízzel; ha a beteg nem tudja megtenni magát, akkor a szájüreg WC -jét az egészségügyi személyzet végzi.

Az eljárás előtt egy tiszta fogkefét meg kell nedvesíteni forró vízzel, és át kell vezetni mindkét arc, nyelv és íny nyálkahártyáján.

Aktívan öblítse le a beteg száját meleg forralt vízzel.

Az inhalátor segítségével hagyja, hogy a beteg lenyeljen 20-30 ml 3-10% -os steril sóoldatot.

Gyűjtse össze az indukált köpetet egy speciális steril eldobható, csavaros fedéllel ellátott tartályban vagy egy megfelelően előkészített steril üvegedényben.

Vigye át a mintát a laboratóriumba.

A köpetmintával egyidejűleg a laboratóriumnak el kell küldenie egy mintát a garatból (garatból), amelyet a száj WC után és közvetlenül a köpet összegyűjtése előtt gyűjtöttek, szabadon elválasztva (köptetve) vagy kiváltva.

6.5.2.2. Tracheostomia és endotracheális aspirációk. A tracheostomiát mikroorganizmusok kolonizálják már 24 órával a beteg intubálása után, aminek következtében a tenyésztési vizsgálat eredményei alacsony klinikai jelentőséggel bírnak. Tekintettel a fentiekre, az intubált betegek tenyésztési eredményeit folyamatosan össze kell hasonlítani a klinikai adatokkal (például láz vagy infiltrátumok megjelenése röntgenfelvételen).

Ha lehetséges, a hörgőt vagy a bronchoalveoláris öblítőmintákat összegyűjtjük a kaparások vagy a biopsziák összegyűjtése előtt. A szabályt az diktálja, hogy el kell kerülni a felesleges vért a keletkező folyadékban, mert a vér megváltoztathatja a minta sejtes és nem sejtes összetevőinek koncentrációját, és befolyásolhatja a mikrobiológiai elemzés eredményét.

Gyűjtse össze a leszívott mintát steril eldobható, csavaros fedéllel ellátott tartályba vagy megfelelően felszerelt steril üvegtartályba, vagy dugóval ellátott, steril, eldobható üvegcsőbe, vagy szállítsa a laboratóriumba zárt fecskendőben, levegőt eltávolítva.

6.5.2.3. Bronchoszkóp segítségével nyert minták. Bronchoalveolaris mosás (választott minta), öblítés a hörgőkből (alacsony érzékenység a tüdőgyulladás diagnosztizálásakor), kaparás a hörgőkből (jelentősebb, mint az öblítés), transztrachealis biopsziás minták nyerhetők úgy, hogy egy nem intubált betegnek transznazálisan vagy transoralisan bronchoszkópot vezetnek be, vagy intubált beteg endotracheális csövén keresztül.

Öblítési minta megszerzése a hörgőkből vagy a bronchoalveoláris mosásból:

steril, nem bakteriosztatikus (hivatalos) sóoldatot fecskendővel fecskendeznek be a bronchoszkóp biopsziás csatornáján keresztül külön-külön (5-20 és 100 ml közötti teljes térfogat);

a következő adag sóoldat beadása előtt óvatosan szívja fel a fecskendő behelyezett részét egy csavaros kupakkal ellátott steril eldobható edénybe, vagy egy eldobható vagy üvegből készült, dugóval ellátott csőbe, vagy hagyja azt zárt fecskendőben, miután eltávolította a levegőt ( általában a mosott sóoldat 50-70% -a mosogatás);

minden leszívandó részt külön edénybe gyűjtünk;

az eljárás végén egyesítse az azonos helyről nyert mintákat. Minták különböző webhelyekről (például jobbra felső lebeny tüdő és jobb alsó lebeny) csak orvosával folytatott konzultációt követően szabad összekapcsolni;

irányban jelezze a befecskendezett sóoldat teljes térfogatát.

A hörgőkből származó kaparási minta megszerzése:

egy polietilénglikollal (vagy más megfelelő reagenssel) kezelt disztális végű teleszkópos kettős katétert helyeznek be a bronchoszkóp biopsziás csatornáján, hogy megakadályozzák a minta szennyeződését;

gyűjtse össze az anyagot steril, eldobható, csavaros kupakkal ellátott edényben vagy szállítótartályban anaerob közeggel, vagy steril csőben, tioglikolos közeggel, szorosan lezárva steril gumidugóval;

szállítsa az anyagot a laboratóriumba.

A transzbronchiális biopszia megszerzéséhez mintát kell gyűjteni a bronchoszkóp biopsziás csatornáján keresztül, és csavaros kupakkal ellátott steril eldobható edénybe helyezve, kis mennyiségű (1-2 ml) nem bakteriosztatikus (hivatalos) sóoldattal vagy tioglikol közeggel ellátott csőben, gumi dugóval szorosan lezárva vigye át a laboratóriumokba

6.5.2.4. Tüdőszívó minták. A minta összegyűjtéséhez a tűt a szegycsonton keresztül a tüdő infiltrátumába kell behelyezni, CT -szkenner irányítása alatt. Az anyagot a gyulladás fókuszából szívják fel. Ha nagy a beszivárgás vagy több, akkor több mintát kell beszerezni a megfelelő gócokból vagy több mintát egy nagy gócból. Az anyagot anaerob közeggel ellátott szállítótartályban vagy tioglikolos közeggel ellátott üvegcsőben vagy csavarozható eldobható edényben szállítják a laboratóriumba.

6.5.2.5. Tüdőbiopsziás minták. Ha lehetséges, szerezzen be 1-3 cm-es szövetdarabokat, ha a lézió nagy vagy több, akkor több mintát kell gyűjtenie. Helyezze a mintát egy steril, eldobható, csavaros kupakkal ellátott tartályba vagy anaerobok szállítására szolgáló szállítótartályba, vagy egy tioglikolos közeggel ellátott tartályba (kémcsőbe), steril gumidugóval lezárva.

6.6. Minták az urogenitális rendszer fertőző és gyulladásos folyamataihoz

6.6.1. Vizeletminták.

6.6.1.1. A mintavétel általános szabályai:

nem szabad vizeletet gyűjteni az ágyneműből vagy a vizeletzsákból;

a természetes vizelés során végzett vizeletvizsgálathoz használja a reggeli középső részt;

A mintagyűjtés előtt alaposan ki kell öblíteni a külső nemi szerveket és a területet végbélnyílás forró forralt víz; Ebben az esetben különös figyelmet kell fordítani a férfiak húgycsőnyílásának kezelésére (a hüvely előcsarnoka - nőknél) annak biztosítására, hogy az eljárás során a minta ne szennyeződjön tovább mikrobákkal;

a feldolgozáshoz nem szabad fertőtlenítőszereket használni, mert mintába vezetve gátolhatják a mikroorganizmusok szaporodását;

a mintát legkésőbb a begyűjtéstől számított 2 órán belül továbbítják a laboratóriumba;

minták gyűjtéséhez és laboratóriumba szállításához használjon csavaros kupakkal ellátott steril eldobható edényeket vagy kémcsöveket (lehetséges steril, speciálisan rögzített üvegcsövek használata gázáteresztő cellulóz vagy pamut géz dugóval, de különös figyelmet kell fordítani arra, hogy ne áztassa a parafát);

a szuprapubikus hólyaglyukasztási technikával nyert aspirációs minták laboratóriumba történő szállítását speciális anaerob közeggel ellátott szállítótartályban vagy tű nélküli zárt fecskendőben kell elvégezni;

mintákat, ha vírusfertőzés gyanúja merül fel, olvadt jégre helyezett steril eldobható edényben szállítják a laboratóriumba (szárazjég nem megengedett!);

a katéterrel történő mintagyűjtésre irányuló eljárásokat (különösen nőknél) az aszepszis szabályainak gondos betartásával kell végrehajtani, hogy a katéter behelyezése közben ne lehessen beteget elszennyezni;

mikrobiológiai kutatásokhoz nem szabad napi m

6.6.1.2. Vizeletminta gyűjtése nőktől természetes vizelés során.

Használjon közegként szolgáló tápközeget az első vizeletáramlásnak el kell távolítania a kommenseket, esetleg a húgycsőben. A következő szakaszokon összegyűjtött mintának szennyeződésmentesnek kell lennie. Az ilyen anyagok pozitív eredményeinek megbízhatósága 80%, ha egy mintát vesznek, 90% - két egymást követő és 100% - három, ha minden minta azonos eredményt ad.

A mintát gyűjtő egészségügyi szakembernek mosson kezet szappannal, öblítse le vízzel és szárítsa meg. Ha a mintát a beteg maga gyűjti, részletesen elmagyarázza neki, hogyan történik ez, figyelembe véve a fenti készítményt, és figyelmeztet arra, hogy mi történhet, ha megszegi a szabályokat:

alaposan öblítse le a húgycső nyílását és a hüvely előcsarnokát, valamint a perineumot és a végbélnyílást szappanos vízzel vagy folyékony szappannal, öblítse le meleg forralt vízzel, szárítsa meg steril gézruha;

a hüvely nyílását steril pamut törlővel kell lezárni;

vizelés közben tartsa szét a külső szeméremajkakat;

vizelés közben kis mennyiségű vizeletet engedjen le egy speciális tartályba ártalmatlanítás céljából;

A vizelet közepes részét (10-20 ml) gyűjtse össze egy speciális eldobható, csavaros kupakkal ellátott edényben vagy steril üvegtartályban, amelyet kifejezetten a laboratóriumba szereltek.

6.6.1.3. Vizeletminta gyűjtése a férfiaktól természetes vizelés során.

Férfiaknál a vizelet egy része szükséges a mikrobiológiai vizsgálathoz. lényegesen kevésbé valószínű, hogy fertőzöttek, mint a nők.

A mintát gyűjtő személynek mosson kezet szappannal, öblítse le vízzel és szárítsa meg. Ha a beteg saját maga gyűjt mintákat, részletesen el kell magyarázni neki, hogyan történik ez, figyelembe véve az alább felsorolt ​​készítményeket, és figyelmeztetnie kell arra, hogy mi történhet a szabályok megsértése esetén:
spp@cntd.ru, kitaláljuk.